硫氧還蛋白氧化還原酶（thioredoxin reductase, TrxR）試劑盒說明書

分光光度法 50 管/48 樣

硫氧還蛋白氧化還原酶試劑盒 谷胱gan肽系列

正式測定前務必取 2-3 個預期差異較大的樣本做預測定測定意義：

TrxR 是一種NADPH 依賴的包含FAD 結構域的二聚體硒酶，屬于吡啶核苷酸-二硫化物氧化還原酶家族成員，與硫氧還蛋白以及 NADPH 共同構成了硫氧還蛋白系統。TrxR 與GR 活性類似，催化 GSSG 還原生成GSH，是谷胱gan肽氧化還原循環關鍵酶之一。

測定原理：

TrxR 催化NADPH 還原DTNB 生成TNB 和NADP⁺，TNB 在 412 nm 有特征吸收峰，通過測定 412nm波長處TNB 的增加速率，即可計算TrxR 活性。

組成：

試劑三：粉劑×1 瓶，4℃保存。臨用前加入 5 ml 蒸餾水溶解。

自備儀器和用品：

可見分光光度計、低溫離心機、可調節移液器、1ml 玻璃比色皿和蒸餾水。

粗酶液提取：

組織：按照組織質量（g）：試劑一體積(ml)為 1：5~10 的比例（建議稱取約 0.1g 組織，加入 1ml 試劑一）進行冰浴勻漿。8000g，4℃離心 10min，取上清置冰上待測。

細菌、真菌：按照細胞數量（104 個）：試劑一體積（ml）為 500~1000：1 的比例（建議 500 萬細胞加入 1ml 試劑一），冰浴超聲波破碎細胞（功率 300w，超聲 3 秒，間隔 7 秒，總時間 3min）；然后 8000g， 4℃，離心 10min，取上清置于冰上待測。

血清等液體：直接測定。

TrxR 測定操作：

分光光度計預熱 30 min，調節波長到 412nm，用蒸餾水調零。

試劑一在 25℃（一般物種）或者 37℃（哺乳動物）預熱 30min。

測定管：取 1ml 玻璃比色皿，加入 100μl 試劑二，100μl 試劑三，700μl 試劑一，100μl 上清液，迅速混勻后于 412 nm 測定 10 s 和 310 s 吸光度，記為A3 和A4。△A 測定管=A2-A1。

TrxR 活性計算公式：

按蛋白濃度計算

活性單位定義：在 25℃或者 37℃中，每毫克蛋白每分鐘催化 1nmol DTNB 還原為 1 個酶活單位。

TrxR（nmol/min /mg prot）=△A 測定管÷ε÷d×V 反總÷(Cpr×V 樣)÷T

= 147×△A 測定管÷Cpr

按樣本質量計算

活性單位定義：在 25℃或者 37℃中，每克樣本每分鐘催化 1nmol DTNB 還原為 1 個酶活單位。

TrxR（nmol/min /g 鮮重）=△A 測定管÷ε÷d×V 反總÷(W×V 樣÷V 樣總)÷T

= 147×△A 測定管÷W

按細胞數量計算

活性單位定義：在 25℃或者 37℃中，每 104 個細胞每分鐘催化 1nmol DTNB 還原為 1 個酶活單位。

TrxR（nmol/min/104 cell）=△A 測定管÷ε÷d×V 反總÷(細胞數量×V 樣÷V 樣總)÷T

= 147×△A 測定管÷ 細胞數量

按液體體積計算

活性單位定義：在 25℃或者 37℃中，每毫升液體每分鐘催化 1nmol DTNB 還原為 1 個酶活單位。

TrxR（nmol/min /ml）=△A 測定管÷ε÷d×V 反總÷V 樣÷T

= 147×△A 測定管

ε：TNB 在 412nm 處的微摩爾消光系數，0.0136 L/μ mol/cm；d：比色皿光徑，1cm；V 反總：反應體系總體積（L），1000μl=0.001 L；Cpr：上清液蛋白質濃度（mg/ml），需要另外測定；V 樣：加入反應體系中上清液體積（ml），100μl=0.1 ml；V 樣總：加入提取液體積，1ml；W，樣本質量，g；T：反應時間（min）， 5 min。

注意事項:

測定前須先取 1～2 個樣做預實驗，哺乳動物組織及血液制品TrxR 活力測定時，一般須用蒸餾水稀釋5 倍左右；測定過程操作須迅速。

試劑二和試劑三配制好后 3 天內使用完。

硫氧還蛋白氧化還原酶試劑盒 谷胱gan肽系列