Ca++ Mg++- ATP 酶活性測定說明書

分光光度法 50 管/24 樣

Ca++ Mg++- ATP 酶活性測定 氧化磷酸化系列

正式測定前務必取 2-3 個預期差異較大的樣本做預測定測定意義：

Ca⁺⁺ Mg++-ATP 酶廣泛分布于植物、動物、微生物和細胞中，可催化ATP水解生成ADP 和無機磷。

測定原理：

根據Ca⁺⁺ Mg++-ATP 酶分解 ATP 生成ADP 及無機磷，通過測定無機磷的量來確定ATP 酶活性高低。

試劑的組成和配制：

試劑四：粉劑×3 支，-20℃保存。用時每支加 1ml 蒸餾水，現用現配；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融；

試劑六：粉劑×1 瓶，4℃保存。用時加入 3ml 蒸餾水， 4℃保存；

試劑七：粉劑×1 瓶, 4℃保存。用時加入 25ml 蒸餾水，溶解后 4℃保存一周；試劑八：粉劑×1 瓶, 4℃保存。用時加入 25ml 蒸餾水，溶解后 4℃保存一周；

0.5μmol/ml 標準磷應用液配制：將試劑十 20 倍稀釋，即取 0.1ml 試劑十加 1.9ml 蒸餾水充分混勻；定磷劑的配制：按 H2O: 試劑七:試劑八:試劑九=2:1:1:1 的比例配制，配好的定磷劑應為淺黃色。若無色則試劑失效，若是藍色則為磷污染，定磷劑現用現配。

注意：配試劑最好用新的燒杯、玻棒和玻璃移液器，也可以用一次性塑料器皿，避免磷污染。

需自備的儀器及用品:

可見分光光度計、水浴鍋、臺式離心機、可調式移液器、1ml 玻璃比色皿、研缽、冰和蒸餾水。

樣品酶液的制備：

1、細菌、細胞或組織樣品的制備：

細菌或培養細胞：先收集細菌或細胞到離心管內，離心后棄上清；按照細菌或細胞數量（104 個）：提取液體積（ml）為 500~1000：1 的比例（建議 500 萬細菌或細胞加入 1ml 提取液），超聲波破碎細菌或細胞（冰浴，功率 20％或 200W，超聲 3s，間隔 10s，重復 30 次）；8000g 4℃離心 10min，取上清，置冰上待測。

組織：按照組織質量（g）：提取液體積(ml)為 1：5~10 的比例（建議稱取約 0.1g 組織，加入 1ml 提取液），進行冰浴勻漿。8000g 4℃離心 10min，取上清，置冰上待測。

2、血清（漿）樣品：直接檢測。

操作步驟：

1、分光光度計預熱 30min 以上，調節波長至 660nm，蒸餾水調零；

2、加樣表(在 1.5ml 棕色EP 管中按下表依次加樣）；

混勻，37℃（哺乳動物）或 25℃（其他物種）準確水浴 10min

混勻，8000g，25℃離心 10min，取上清液 3 定磷（1.5mlEP 管中依次加入下列試劑）

混勻，室溫放置 30 min，在 660nm 處比色。

注意事項：

1、由于每一個樣都必須做對照，本試劑盒 50 管只能測 24 份Ca++ Mg++-ATP 酶。

2、此法具有微量、靈敏、快速的特點。所以對測定所用試管要求嚴格無磷。避免磷污染是檢測成敗的關鍵。

3、空白管和標準管只要做一管。

計算：

1、血清（漿）Ca++ Mg++-  ATPase 活力的計算:

定義：規定每小時每毫升血清（漿）中 Ca++ Mg++- ATP 酶分解ATP 產生 1μmol 無機磷的量為一個酶活力單位。

Ca++ Mg++-ATP 酶活力（μmol /h/ mL）=[ C 標準管×V 總]×（A 測定管-A 對照管）÷（A 標準管-A 空白管）÷V 樣÷T=7.5×（A 測定管-A 對照管）÷（A 標準管-A 空白管）

組織中Ca++ Mg++-  ATPase 的計算：

2、組織、細菌或細胞中Ca++ Mg++-      ATPase 活力的計算：

按蛋白濃度計算：

定義：每小時每毫克組織蛋白中 Ca++ Mg++- ATP 酶分解ATP 產生 1μmol 無機磷的量為一個酶活力單位。

Ca++ Mg++-ATP 酶活力(μmol/h/mg)=[C 標準管×V 總]×（A 測定管-A 對照管）÷（A 標準管-A 空白管）÷（V 樣×Cpr）÷T =7.5×（A 測定管-A 對照管）÷（A 標準管-A 空白管）÷Cpr

按樣本鮮重計算：

定義：每小時每克組織中Ca++ Mg++-ATP 酶分解ATP 產生 1μmol 無機磷的量為一個酶活力單位。

Ca++ Mg++-ATP 酶活力(μmol/h/g)= [C 標準管×V 總]×（A 測定管-A 對照管）÷（A 標準管-A 空白管）÷(W× V 樣÷V 樣總)÷T=7.5×（A 測定管-A 對照管）÷（A 標準管-A 空白管）÷W

按細菌或細胞密度計算：

定義：規定每小時每 1 萬個細菌或細胞中 Ca⁺⁺ Mg++-ATP 酶分解ATP 產生 1μmol 無機磷的量為一個酶活力單位。

Ca⁺⁺ Mg++-ATP 酶活力(μmol/h /10⁴)= [C 標準管×V 總]×（A 測定管-A 對照管）÷（A 標準管-A 空白管）÷(500×V 樣÷V 樣總)÷T=0.015×（A 測定管-A 對照管）÷（A 標準管-A 空白管）

C 標準管：標準管濃度，0.5μmol/mL；V 總：酶促反應總體積，0.5mL；V 樣：加入樣本體積，0.2mL ； V 樣總：加入提取液體積，1mL；T：反應時間，1/6 小時；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/mL；W：樣本鮮 重，g；500：細菌或細胞總數，500 萬。

Ca++ Mg++- ATP 酶活性測定 氧化磷酸化系列