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淋巴成纖維細胞培養方法：

1、細胞傳代：細胞密度達到80-90%時即可傳代

①棄去培養上清，用PBS或生理鹽水清洗1-2次；

②加入2ml0.25%胰酶（T25瓶），使胰酶覆蓋整個瓶或皿，蓋好放入培養箱消化；

③1-2min后，顯微鏡下觀察細胞，若大部分細胞回縮且有少量細胞脫落，輕輕吹打下確認消化情況后加入*培養基終止消化；若細胞還是貼壁，放回培養箱繼續消化至可以輕輕吹打下為止；

④將細胞懸液1000RPM左右條件下離心4min，棄上清；

⑤用新鮮培養基重懸后加入培養瓶或皿中，T25培養瓶加6-8ml培養基；

⑥懸浮細胞直接離心收集，細胞沉淀重懸后分到新培養瓶中。

2、細胞復蘇：

①將凍存管在37℃溫水中快速搖晃融化，時間1min左右，加入4-5ml培養基混勻。

②在1000RPM左右條件下離心4min，棄上清,加1-2ml培養基吹勻，將細胞懸液加入培養瓶中，補加適量培養基。

3、細胞凍存：待細胞生長狀態良好時進行細胞凍存保種

①棄去培養上清，用PBS或生理鹽水清洗1-2次，加入1mL 0.25%胰蛋白酶（T25瓶）

②1-2min后，顯微鏡下觀察細胞，大部分細胞回縮且有少量細胞脫落，輕輕吹打下確認消化情況后加入*培養基終止消化；

③將細胞懸液1000RPM左右條件下離心4min，棄上清，加1ml凍存液重懸細胞；

④將凍存管放入程序降溫盒，放入-80℃冰箱，4小時后將凍存管轉入液氮罐儲存。
4、細胞計數與活力評估：在進行細胞傳代、復蘇或凍存前，進行細胞計數與活力評估是至關重要的步驟。①取少量細胞懸液，與等體積的0.4%臺盼藍溶液混合，靜置2-3分鐘。②使用血細胞計數板，在顯微鏡下計數活細胞（未被臺盼藍染色的細胞）與死細胞（被臺盼藍染成藍色的細胞）。③計算細胞總數及活力百分比（活細胞數/總細胞數×100%）。確保細胞活力高于90%方可用于后續實驗，以保證實驗結果的準確性和可靠性。

5、培養環境優化：淋巴成纖維細胞的培養還需注意培養環境的細節優化。①維持培養箱內的溫度恒定在37℃，濕度飽和，并通入5% CO?以保持適宜的pH值。②定期更換培養基，一般為每2-3天一次，以去除代謝產物，補充營養物質。③使用經過滅菌處理的器材和試劑，減少污染風險。通過這些措施，可以進一步提升細胞的生長狀態，促進實驗的順利進行。