前言EtO 用于對食品進行滅菌，以消滅昆蟲和細菌（例如沙門氏菌）。乙烯氯醇或 2-CE 是 EtO 與食品中存在的氯離子反應產生的衍生物。由于 EtO 具有致癌性和毒性，因此在歐盟 (EU)被禁用。此前，已開發出 EtO（EtO 和 2-CE）的分析方法，這些方法包括使 EtO 在酸性條件下轉化為 2-CE。這些方法費時、費力，并且需要使用大量有害溶劑。由于 EtO 具有揮發性，因此樣品前處理至關重要。2020 年 12 月，歐盟農藥殘留參考實驗室 (EURL) 建議采用單殘留法分析芝麻中的 EtO 和 2-CE，該方法使用 QuEChERS 萃取，然后進行 GC/MS/MS 分析。本研究采用的方法展示了使用自動液體進樣器將樣品引入8890 氣相色譜與 7010 GC/MS 三重四極桿質譜的聯用系統。

實驗部分標樣配制由于 EtO 具有高揮發性，因此其標準溶液在低溫下 (< 10 °C)進行制備。作為稀釋劑，乙腈在使用前于冰箱（處于 -20 °C）中放置至少 15 min。將冷分析標準溶液用冷乙腈稀釋，制得濃度均為 1 mg/mL 的 EtO 和 2-CE 標準儲備溶液。將標準儲備溶液用乙腈進一步稀釋，獲得 EtO 和 2-CE 濃度均為 10 µg/mL 的工作標準溶液。所有校準標樣（2.0、5.0、10.0、20.0、50.0、100 和 200 ng/mL）均通過用乙腈稀釋儲備溶液以現用現配。將所需量的溶液后加標至每種基質的提取物中，制得亞麻籽、孜然粉和紅辣椒粉的基質匹配標樣。分析前，所有儲備溶液均保存在 -20 °C 的溫度下以避免降解。樣品前處理根據 EN 15662 程序，采用 QuEChERS 萃取流程對亞麻籽、孜然粉和紅辣椒粉的均質樣品進行處理（圖 1）。稱取各樣品約2.00 ± 0.01 g，放入 50 mL 離心管中。

向離心管中加入 10 mL冷水，加蓋，渦旋混合 1 min，以確保樣品水化，然后加入10.0 mL 冷乙腈和兩個陶瓷均質子以提高萃取效率。將離心管蓋緊并振搖 10 min。加入 QuEChERS 萃取鹽（4 g MgSO4、1 g NaCl、1 g 檸檬酸鈉和 0.5 g 檸檬酸二鈉鹽倍半水合物），并將離心管振搖 3 分鐘。然后將樣品以 6000 rpm 離心 5 分鐘。將上層乙腈相 (6.0 mL) 轉移至 QuEChERS 分散試劑盒15 mL 管（150 mg PSA、150 mg C18EC 和 900 mg MgSO4）中。將該管渦旋混合 30 s，然后以 5000 rpm 離心 5 min。離心后，將上清液轉移至 GC 樣品瓶中以備分析。

結果與討論校準對溶劑中濃度為 2、5、10、20、50 和 100 ng/mL 的 EtO 和2-CE 進行了基質校準。對亞麻籽、孜然粉和紅辣椒粉的加標后基質提取物進行了類似的校準，獲得了優異的 R2 值 (> 0.99)。圖 8 和圖 9 分別顯示了乙腈中 EtO 和 2-CE 的線性。圖 10 和圖 11 分別顯示了亞麻籽基質中 EtO 和 2-CE 的線性。圖 1. 用于樣品萃取和凈化的 QuEChERS 工作流程標準品峰面積重現性通過進樣基質提取物中的濃度為 10 ppb 的 EtO 和 2-CE，獲得了可重復的洗脫。如表 2 所示，根據對亞麻籽、孜然粉和紅辣椒粉中的 10 ppb 基質標樣進行 6 次重復進樣所得到的峰面積計算出 EtO 和 2-CE 的 %RSD 數據。