羅氏LightCycler® 480 實時熒光定量PCR系統是實驗室中常用的一款中高通量qPCR平臺。以下是其標準的使用步驟流程，適用于絕大多數使用SYBR Green或TaqMan探針進行核酸擴增和定量分析的場景：

羅氏LightCycler® 480 使用步驟

一、實驗準備

1. 核酸提取

• 提取DNA或RNA（如為RNA需進行反轉錄獲得cDNA）

• 評估濃度與純度（建議A260/A280介于1.8–2.0）

2. 試劑準備

• 根據實驗方案選擇合適的qPCR試劑（如SYBR Green I Master、Probe Master）

• 準備引物/探針工作液，確保無氣泡、低溫避光保存

二、反應體系配置

標準反應體系（以20 µL體積為例）：

注意：

• 所有反應成分應在冰上配置；

• 引物濃度通常在0.2–0.5 µM之間；

• 若使用多重qPCR，請確保熒光通道互不干擾。

三、裝板與封板

1. 將反應混合液分裝至96孔或384孔反應板中；

2. 使用專用光學封板膜密封反應板；

3. 輕壓封膜并離心去除氣泡（例如2000 rpm × 30秒）；

4. 插入LightCycler® 480中指定托架位置。

四、程序設定（軟件操作）

在LightCycler® 480 Software中設置PCR程序，以下為常用的SYBR Green法設定模板：

1. 預變性：95°C, 10 min

2. 循環階段（40–45 cycles）：

• 變性：95°C, 10 sec

• 退火：60°C, 20 sec（具體溫度依引物而定）

• 延伸：72°C, 20 sec（有時與退火合并）

3. 熔解曲線分析（如用SYBR Green）：

• 95°C, 5 sec

• 65°C–95°C逐步升溫，每步0.5°C，采集熒光

4. 熒光采集通道：根據染料選擇通道（如FAM通道用于SYBR或FAM-TaqMan探針）

五、運行與監控

1. 確認熱蓋溫度（一般為105°C）；

2. 啟動程序運行，期間可實時觀察擴增曲線；

3. 運行時間約為1.5–2小時（視程序設定而定）；

六、數據分析

1. 擴增曲線查看：確認每孔反應特征，是否存在拖尾、背景信號；

2. Ct值判讀：導出或自動生成Ct結果表；

3. 熔解曲線分析（SYBR Green）：判斷特異性與是否出現非特異擴增；

4. 標準曲線法（如絕對定量）：生成曲線并計算拷貝數；

5. 表達量分析（如相對定量）：使用ΔΔCt法比較表達差異；

七、數據導出與保存

• 可導出 .xls, .pdf, .xml 等格式結果；

• 保存完整項目用于追溯和后續分析；

• 建議同時備份至本地和實驗室服務器。

八、儀器清潔與維護

• 每次使用后清理反應板托盤；

• 定期進行光路校準與溫控驗證；

• 每月檢查熱蓋壓力與熒光通道響應；

• 若長期不使用，建議進行關機保護處理。