實驗步驟和方法：
 
I部分：樣品制備
 
選項1：用3%乙酸和亞-CH3藍對總有核細胞計數進行細胞稀釋
 
使用磷酸鹽緩沖鹽水或無血清培養基對充分混合的單細胞懸浮液進行適當稀釋。為了準確表示濃度，請使用至少20μL的細胞懸浮液進行稀釋。
 
示例：制備10倍稀釋液
 
在微量離心管或96孔板的孔中加入180μL的3%乙酸和亞-CH3藍。混合細胞懸浮液，將20μL添加到含有3%乙酸和亞-CH3藍的試管或孔中。
 
選項2：通過臺盼藍染料排除對活細胞計數進行細胞稀釋
 
確保要計數的細胞懸浮液*重新懸浮。在細胞沉降之前，將適量的細胞懸液(20-200μL)放入離心管中。加入等體積的0.4%臺盼藍并輕輕混合。將混合物在室溫(15°C–25°C)下孵育5分鐘。
 
II部分：使用血細胞計數器進行細胞計數
 
通過用70%C2H6O清潔腔室表面來制備血細胞計數器。擦干。將蓋玻片放在腔室上。
 
使用20μL移液器重新懸浮細胞混合物，并將10μL的染色細胞放入血細胞計室。
 
注意：小心不要移動蓋玻片。允許毛細作用將樣品吸入。
 
將血細胞計數器放在雙目光學顯微鏡的載物臺上。將顯微鏡調整到10倍放大倍率并聚焦在細胞上。
 
使用手動計數計數器，計算血細胞計數器四個外部正方形中的每一個中的細胞（染色的細胞核）（圖1A），包括位于底部和左側周邊的細胞，但不包括位于頂部和右手邊（圖1B）。如果在第一部分中使用了3%乙酸和亞-CH3藍，則計算染色的細胞核。如果在第一部分中使用了臺盼藍，則計算未染色的活細胞。