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細胞培養板的選擇使用

來源:杭州柏納科技發展有限公司   2022年01月07日 11:54  


細胞培養板的選擇使用


細胞培養板作為培養細胞的一種常用和重要的工具,形狀、規格、用途多樣。

你是否也為如何選擇適合的培養板而迷茫?

你是否正為如何方便、正確使用培養板而苦惱?

你對如何處理培養板是否也有困惑?

對不同的培養板各有什么妙用你又有何體會?

培養板的選擇

1)細胞培養板依底部形狀的不同可分為平底和圓底(U型和V型);

2)培養孔的孔數有6、12、24、48、96、384、1536 孔等;

3)根據材質的不同有Terasaki板和普通細胞培養板。具體選擇時根據培養細胞的類型、所需培養體積及不同的實驗目的而定。

平底和圓底(U型和V型)培養板的區別和選擇

1)貼壁細胞一般用平底培養板。

2)懸浮型細胞的培養一般用V型。

3)U型培養板亦多用于培養懸浮型細胞 。

4)V型培養板有時用做免疫學血凝集的實驗。

不同型狀的板子自然有不同用途

平底的什么類型的細胞都可用,但當細胞數目較少,如做克隆時,就用96孔平底板。

另外﹐做MTT等實驗時﹐無論貼壁和懸浮細胞﹐一般均用平底板。

至于U或V型板﹐一般在某些特殊要求時才使用。如在免疫學方面﹐當做兩種不同淋巴細胞混合培養時﹐需要二者相互接觸以刺激。因此﹐一般需要U型板﹐因細胞會由于重力的作用而聚集在一個很小的范圍內,V型板的用途更少﹐一般用于細胞殺傷實驗時﹐為了使效靶細胞緊密接觸﹐常使用V型板﹐但這種實驗也可用U型板替代(加入細胞后﹐低速離心)。

如果是養細胞的話, 通常是運用平底的, 另外要特別注意材質, 標示"Tissue Culture (TC) Treated"就是養細胞用的。

圓底的通常是拿來做分析, 化學反應, 或是保存樣品用。因為圓底比較好將液體吸得干凈, 如果用平底的就不好吸了。 不過, 如果你是要測吸光值的話, 一定要買平底的才行。

大部分細胞培養都用平底培養板,便于鏡下觀測、有明確的底面積、細胞培養液面高度相對一致,還便于MTT檢測。

圓底培養板主要用于同位素摻入的實驗,需要用細胞收集儀收集細胞的培養,如“混合淋巴細胞培養”等。

問題集錦

問:我看到培養板有4、6、12、24、48、96孔幾種規格 ,但不知道到底什么實驗用哪種規格,請指教。

答:要根據你具體的實驗要求,流式一般用6孔,MTT一般用96孔,細胞爬片一般用24孔等!要具體根據你實驗來定!

問:請問哪位高手知道Terasaki板是什么培養板,與普通細胞培養板有什么區別?謝謝!!

答:Terasaki plate主要是用于晶體學研究,產品設計便于對晶體的觀察與結構分析。

有兩種sitting 和handing drop兩種方法,兩種方法應用產品的外形結構也不同。

材料上選擇crystal class polymer ,特殊的材料有利觀察晶體結構。

細胞培養板主要是PS材料。材料是treated sufface。便于細胞貼壁生長與伸展。當然還有浮游細胞的生長材料,同時還有low binding surface,有關更多實驗材料上的應用與對材料的選擇。

問:我想測吸光度用酶標儀,用多孔細胞培養板行嗎?請問酶標板 多孔細胞培養板有什么區別?

答:用多空細胞培養板測吸光度肯定可以拉,我們經常用它來做樣品的蛋白定量和MTT檢測。

區別:酶標板一般要比細胞培養板貴,細胞板主要做細胞培養,但也可以用來測蛋白濃度;酶標板包括包被板和反應板,一般不能用做細胞培養,它主要做免疫酶聯反應后的蛋白檢測,它需要更高的要求還需要特定的酶標工作液。

如下是個用酶標板檢測冠狀病毒IgM/IgG抗體例子

【操作步驟】

1.加樣品:將標本稀釋液100ul(或2滴)加到包被板內(預留陰陽性及空白對照2-5孔),將待檢血清用PBS或生理鹽水按1:20稀釋后取10ul加入反應孔內。

2.加對照:加入陰性對照1-3孔,陽性對照1孔,各100ul對照血清。空白對照1孔空置。

3.溫育:將反應板震蕩使樣品混勻后,置37℃溫箱或水浴反應20分鐘。

4.洗板:用蒸餾水將濃縮洗滌液15ml稀釋至300ml。(1)手洗:將反應板孔內容物傾出,將洗滌液注滿反應孔,放置30秒鐘后用力甩去,如此重復5次后拍干。(2)機洗:5次,每孔注入洗滌液200ul或注滿,停留30秒鐘后吸盡拍干。

5.加酶標工作液:每孔加入100ul(或2滴)酶標工作液,置37℃溫箱反應20分鐘后,洗板5次,洗板操作同步驟4。

6.顯色和終止反應:將底物A、B液各50ul(或1滴)加到反應孔內,37℃避光顯色10分鐘。每孔加入終止液50ul(或1滴)混勻終止反應。

【結果判定】

1.酶標儀設定波長450nm,先用空白調零,然后測定各孔OD值;如果選用雙波長測定,不必設置空白對照孔。

2.當陰性對照平均OD值小于0.08,陽性對照(pc)OD值大于0.30時,說明試劑盒有效且實驗操作正確,否則應當重復試驗。

3.臨界值(CUT—OFF VALUE)=0.15+陰性對照平均(NC)OD值(當陰性平均OD值小于0.05時,按0.05計算;當陰性平均OD值大于或等于等于0.05時按實際值計算)。

4.標本OD值≤臨界值為陰性,標本OD值>臨界值為陽性。

常用不同培養板的孔底面積及推薦加液量:不同孔板所加培養液的液面都不宜太深,一般在2-3mm范圍,結合不同孔的底面積就可算出各培養孔的適宜加液量。若加液量過多會影響氣體(氧氣)交換,而且在搬動過程中易溢出造成污染。具體所加細胞密度依實驗的目的不同靈活掌握。

細胞培養板的選擇使用  

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