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基因敲除株的制備過程

閱讀:126      發布時間:2025-3-26
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基因敲除株的制備方法有多種,下面以 CRISPR - Cas9 技術為例,介紹基因敲除株的一般制備過程:

設計 gRNA

  • 確定靶位點:根據要敲除的基因序列,選擇合適的靶位點。一般選擇基因的編碼區,尤其是起始密碼子附近或功能結構域所在區域,以確保敲除后能有效破壞基因功能。

  • 設計 gRNA 序列:針對選定的靶位點,設計特異性的 gRNA 序列。gRNA 通常長度為 20 個左右的核苷酸,需與靶 DNA 序列精確互補配對,同時要避免與基因組中其他非靶區域有高度同源性,以減少脫靶效應。

構建表達載體

  • 選擇載體:挑選適合的表達載體,如常用的質粒載體。載體應包含能在宿主細胞中啟動 gRNA 和 Cas9 蛋白表達的啟動子,以及篩選標記基因,如抗生素抗性基因,以便后續篩選陽性克隆。

  • 插入 gRNA 和 Cas9 基因:將合成的 gRNA 序列和 Cas9 基因片段通過基因克隆技術插入到載體中,構建成完整的 CRISPR - Cas9 表達載體。

細胞轉染或轉化

  • 轉染 / 轉化方法選擇:根據宿主細胞類型選擇合適的方法將表達載體導入細胞。對于動物細胞,常用的方法有脂質體轉染、電穿孔法等;對于細菌或酵母細胞,可采用化學轉化、電轉化等方法。

  • 轉染 / 轉化操作:按照所選方法的操作規程進行實驗,將 CRISPR - Cas9 表達載體導入細胞。在導入后,載體進入細胞并在細胞內表達 gRNA 和 Cas9 蛋白,gRNA 引導 Cas9 蛋白識別并結合到靶基因位點。

篩選陽性克隆

  • 初步篩選:利用載體上的篩選標記基因進行初步篩選。例如,使用含有相應抗生素的培養基培養細胞,只有成功導入表達載體并表達出抗性蛋白的細胞才能存活,從而得到初步篩選的陽性細胞克隆。

  • 鑒定陽性克隆:通過 PCR 擴增靶基因區域,然后進行測序分析,確定是否在靶位點發生了基因編輯。只有在靶位點出現堿基缺失、插入或替換等突變,導致基因功能喪失的克隆,才是真正的基因敲除陽性克隆。



  • 基因敲除株的制備過程

單克隆培養與鑒定

  • 單克隆分離:采用有限稀釋法或軟瓊脂平板法等,將篩選出的陽性細胞克隆進行單細胞分離培養,得到單個細胞衍生的克隆群體,確保每個克隆均來自單個基因敲除細胞。

  • 進一步鑒定:對單克隆細胞進行再次鑒定,除了通過測序驗證基因敲除情況外,還可采用 Western blot、免疫熒光等方法檢測基因敲除后蛋白表達水平的變化,以確認基因敲除的效果。

動物模型制備(如需要)

  • 胚胎注射:如果要制備基因敲除動物模型,如小鼠,可將 CRISPR - Cas9 系統注射到受精卵中。通過顯微操作技術,將含有 gRNA 和 Cas9 蛋白或 mRNA 的溶液注射到受精卵的原核或細胞質中,然后將注射后的受精卵移植到代孕母鼠的輸卵管中,讓其發育成胚胎。

  • 基因敲除動物鑒定:待幼鼠出生后,通過提取鼠尾基因組 DNA,采用 PCR 和測序等方法鑒定基因敲除情況,篩選出基因敲除陽性的動物個體,即得到基因敲除株動物模型。


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