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威尼德生物科技(北京)有...

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外周血活T細胞siRNA轉(zhuǎn)染優(yōu)化

閱讀:195      發(fā)布時間:2025-5-13
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摘要

研究通過優(yōu)化電穿孔參數(shù)體系,顯著提升外周血活T細胞的siRNA轉(zhuǎn)染效率。采用威尼德Gene Pulser 830方波型電穿孔儀結(jié)合某品牌siRNA轉(zhuǎn)染試劑,建立標準化實驗流程。實驗結(jié)果顯示:轉(zhuǎn)染效率達85.3±3.1%,細胞存活率維持在92%以上。該方案為T細胞功能研究提供可靠技術(shù)平臺。

引言

原代T細胞轉(zhuǎn)染技術(shù)是免疫學(xué)研究的關(guān)鍵瓶頸。傳統(tǒng)脂質(zhì)體法存在轉(zhuǎn)染效率低(<30%)、細胞毒性高等缺陷,而常規(guī)電穿孔設(shè)備易導(dǎo)致細胞膜不可逆損傷。本研究針對活體T細胞膜電荷特性,采用威尼德Gene Pulser 830方波型電穿孔儀的極性反轉(zhuǎn)技術(shù),突破細胞膜電荷屏障;配合某試劑優(yōu)化核酸保護體系,建立高效低毒的轉(zhuǎn)染方案。

材料與方法

1. 細胞制備

健康供體外周血經(jīng)Ficoll密度梯度離心分離PBMC,使用CD3磁珠分選獲得純度>98%的T細胞,于含IL-2(100U/mL)的RPMI1640培養(yǎng)基中活化48小時。

2. siRNA體系構(gòu)建

靶向CD25基因的siRNA(某品牌,20μM)與轉(zhuǎn)染增強劑按1:3體積比預(yù)混,37℃孵育15分鐘形成復(fù)合物。設(shè)置陰性對照(scrambled siRNA)及空白對照。

3. 電穿孔參數(shù)優(yōu)化

使用威尼德Gene Pulser 830方波型電穿孔儀進行系統(tǒng)測試:

脈沖模式:采用雙極性方波,正向脈沖時間2ms,反向脈沖1ms

電壓梯度:800V/cm、1000V/cm、1200V/cm三組對比

智能阻抗檢測:預(yù)脈沖自動校準細胞懸液導(dǎo)電率

極性反轉(zhuǎn)技術(shù):突破活化T細胞表面電荷極化效應(yīng)

4. 評估體系

流式細胞術(shù)檢測FITC標記siRNA內(nèi)吞效率,qPCR定量CD25 mRNA抑制率,CCK-8法測定24h細胞活性。

結(jié)果

1. 參數(shù)優(yōu)化驗證

1200V/cm組獲得最佳轉(zhuǎn)染效率(85.3±3.1%),顯著高于800V/cm組(62.1±4.7%,p<0.01)。智能阻抗檢測使批次間差異降低至5%以內(nèi)。

2. 細胞活性分析

某試劑組細胞存活率(92.4±2.3%)較常規(guī)轉(zhuǎn)染試劑提升27%(p<0.05),證實其膜修復(fù)成分的有效性。

3. 功能驗證

轉(zhuǎn)染組CD25 mRNA表達下調(diào)78.6±5.2%,蛋白表達抑制率71.3±6.1%,沉默效果持續(xù)96小時以上。

討論

研究創(chuàng)新性應(yīng)用威尼德Gene Pulser 830的三大核心技術(shù):

1. 動態(tài)極性調(diào)控:通過毫秒級極性反轉(zhuǎn)中和細胞膜表面電荷,使siRNA穿透效率提升40%

2. 波形智能監(jiān)控:10英寸觸控屏實時顯示脈沖波形,確保參數(shù)精確復(fù)現(xiàn)(CV值<3%)

3. 預(yù)編程系統(tǒng):直接調(diào)用優(yōu)化后的T細胞轉(zhuǎn)染程序(代碼CT-2024),減少摸索周期

與傳統(tǒng)指數(shù)波設(shè)備相比,該方案將原代T細胞轉(zhuǎn)染效率從行業(yè)平均45-60%提升至85%以上,且保持>90%的細胞活性,滿足CRISPR編輯等精密操作需求。

應(yīng)用拓展

本方案已成功應(yīng)用于:

CAR-T細胞PD-1基因沉默

調(diào)節(jié)性T細胞FOXP3功能研究

艾滋病病毒受體CCR5敲除實驗

技術(shù)保障體系

威尼德Gene Pulser 830提供:

符合GLP規(guī)范的IQ/OQ/PQ認證文件

活體電轉(zhuǎn)染專用電極槽(0.4cm孔徑)

7×24小時遠程技術(shù)支援

結(jié)論

研究建立的標準化轉(zhuǎn)染體系攻克了原代T細胞難轉(zhuǎn)染的技術(shù)瓶頸。威尼德Gene Pulser 830方波型電穿孔儀憑借其智能參數(shù)調(diào)控與某試劑的協(xié)同增效作用,為免疫細胞治療研究提供關(guān)鍵技術(shù)支撐。

參考文獻

1. Analysis of gene function in somatic mammalian cells using small interfering RNAs.[J].Harborth J;Tuschl T;Elbashir SM;Weber K,Methods: A Companion to Methods in Enzymology.2002,第2期

2. Nonspecific, concentration-dependent stimulation and repression of mammalian gene expression by small interfering RNAs (siRNAs)[J].Persengiev SP.;Zhu XC.;Green MR.,Rna.2004,第1期

3. RNA interference shows critical requirement for NF-kappaB p50 in the production of IL-12 by human dendritic cells.[J].Vainchenker W;Laderach D;Galy A;Compagno D;Danos O,The Journal of Immunology: Official Journal of the American Association of Immunologists.2003,第4期

4. Silencing T-bet Defines a Critical Role in the Differentiation of Autoreactive T Lymphocytes.[J].Northrop SC;Ratts RB;Rocchini AE;Sikder D;Lovett Racke AE;Hussain RZ;Choy J;Racke MK,Immunity.2004,第5期

5. Small RNAs and immunity.[J].McManus MT,Immunity.2004,第6期


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