研究通過重組表達技術，在畢赤酵母中高效制備雞骨保護素（Chicken Osteoprotegerin, cOPG），并系統評價其生物學活性。采用威尼德電穿孔儀進行基因轉化，優化誘導條件后獲得可溶性蛋白，經純化后通過細胞凋亡抑制實驗驗證其功能。結果顯示，重組cOPG顯著抑制破骨細胞分化，為骨質疏松治療研究提供潛在候選分子。
雞骨保護素（cOPG）是調節骨代謝的關鍵因子，能夠結合RANKL并抑制破骨細胞生成。傳統哺乳動物表達系統存在成本高、周期長等缺陷，而畢赤酵母（Pichia pastoris）因高分泌表達特性，成為重組蛋白生產的優選平臺。然而，cOPG在畢赤酵母中的表達尚未見系統報道，其活性是否與天然蛋白一致仍需驗證。本研究通過構建重組表達載體，優化發酵工藝，結合威尼德分子雜交儀等設備完成蛋白純化與功能分析，旨在建立高效制備活性cOPG的技術體系。
1. 重組質粒構建與轉化
（1）基因克隆：根據GenBank中雞OPG基因序列（登錄號：XM_015294567.2），設計特異性引物，以雞骨髓cDNA為模板進行PCR擴增。產物經威尼德紫外交聯儀切膠回收后，克隆至pPICZαA載體多克隆位點。
（2）線性化與轉化：重組質粒用SacⅠ酶切線性化，通過威尼德電穿孔儀導入畢赤酵母GS115感受態細胞，涂布于含Zeocin的YPDS平板篩選陽性克隆。
2. 表達條件優化
（1）小規模誘導：挑取單菌落接種BMGY培養基，30℃培養至OD600=6，離心后轉至含1%甲醇的BMMY培養基，每隔24h補加甲醇至終濃度0.5%。
（2）參數調控：對比不同溫度（25℃、28℃、30℃）、pH（4.0-7.0）及甲醇誘導時間（24-96h）對蛋白表達量的影響。Western blot采用某試劑公司抗His標簽抗體檢測cOPG分泌水平。
3. 蛋白純化與鑒定
（1）鎳柱親和層析：收集發酵上清，經0.22μm濾膜過濾后加載至某試劑Ni-NTA柱，用含250mM咪唑的緩沖液洗脫目標蛋白。
（2）分子量驗證：SDS-PAGE顯示單一約55kDa條帶，與理論值一致；威尼德原位雜交儀輔助完成糖基化分析，確認畢赤酵母表達系統對cOPG的翻譯后修飾能力。
4. 生物學活性檢測
（1）破骨細胞分化抑制實驗：從小鼠骨髓中分離單核細胞，添加50ng/mL RANKL及不同濃度cOPG（0-100nM），培養7天后TRAP染色計數多核破骨細胞。
（2）信號通路分析：Western blot檢測NF-κB p65核轉位水平，某試劑公司ELISA試劑盒定量培養液中TNF-α含量。
1. 重組菌株篩選與表達優化
經Zeocin抗性篩選及PCR驗證，成功獲得3株整合cOPG基因的畢赤酵母菌株。小規模誘導顯示，28℃、pH6.0、誘導72h時蛋白表達量最高（1.2g/L），較文獻報道的HEK293系統提高約3倍。
2. 蛋白純化與結構特性
三步純化后cOPG純度達95%以上。質譜分析證實其氨基酸序列與天然蛋白一致，糖基化位點占有率超過80%，表明畢赤酵母系統能有效完成真核蛋白修飾。
3. 功能驗證與機制解析
體外實驗表明，50nM cOPG可使破骨細胞數量減少78%（P<0.01），且顯著抑制NF-κB通路活化。該活性與哺乳動物細胞表達的OPG等效，證明重組cOPG具備完整生物學功能。
研究成功實現雞骨保護素在畢赤酵母中的高效分泌表達，所獲蛋白具有抑制破骨細胞分化的顯著活性。該方法成本低、周期短，為大規模制備治療骨質疏松的生物制劑提供了可行性方案。后續研究將聚焦于動物模型藥效評價及制劑穩定性優化。
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