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反轉錄病毒介導Luciferase基因穩定轉染細胞株構建及生物發光成像研究

閱讀:231      發布時間:2025-2-25
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摘要

反轉錄病毒介導的Luciferase基因穩定轉染細胞株,并利用生物發光成像技術進行驗證。通過反轉錄病毒感染、篩選及生物發光成像分析,成功獲得了穩定表達Luciferase的細胞株。實驗結果表明,該細胞株具有穩定的生物發光特性,適用于后續的活體成像研究。

引言

反轉錄病毒作為一種高效的基因傳遞工具,廣泛應用于基因治療和基因功能研究。Luciferase基因作為一種常用的報告基因,其表達可以通過生物發光成像技術進行實時監測。本研究通過反轉錄病毒介導的基因轉染技術,構建了穩定表達Luciferase的細胞株,并利用生物發光成像技術對其進行了驗證。該研究為后續的活體成像研究提供了可靠的實驗材料。

實驗部分

1. 材料與方法

1.1 細胞培養

實驗所用細胞為某品牌提供的HEK293T細胞和HeLa細胞。細胞培養于含10%胎牛血清(某試劑)DMEM培養基(某試劑)中,置于37℃、5% CO2的培養箱中培養。

1.2 反轉錄病毒載體構建

Luciferase基因克隆至某品牌提供的反轉錄病毒載體pMXs中,構建重組質粒pMXs-Luc。通過某品牌提供的DNA提取試劑盒提取質粒DNA,并進行測序驗證。

1.3 病毒包裝與感染

pMXs-Luc質粒與包裝質粒pCL-Ampho(某試劑)共轉染至HEK293T細胞中,使用威尼德電穿孔儀進行電穿孔轉染。轉染48小時后,收集上清液,過濾后獲得病毒液。將病毒液感染HeLa細胞,加入8 μg/mL的Polybrene(某試劑)以提高感染效率。

1.4 穩定轉染細胞株篩選

感染48小時后,將細胞傳代至含2 μg/mL嘌呤霉素(某試劑)的培養基中進行篩選。篩選2周后,獲得穩定表達Luciferase的HeLa-Luc細胞株。

1.5 生物發光成像分析

HeLa-Luc細胞接種于96孔板中,每孔接種1×10^4個細胞。加入某品牌提供的Luciferase底物(某試劑),使用威尼德分子雜交儀進行生物發光成像分析。成像條件為曝光時間1分鐘,增益設置為中等。

2. 結果與討論

2.1 反轉錄病毒載體構建與驗證

通過測序驗證,成功構建了pMXs-Luc重組質粒。電泳結果顯示,重組質粒大小與預期一致,表明Luciferase基因正確插入至反轉錄病毒載體中。

2.2 病毒包裝與感染

病毒包裝后,通過熒光顯微鏡觀察,發現HEK293T細胞中綠色熒光蛋白(GFP)表達,表明病毒包裝成功。感染HeLa細胞后,通過嘌呤霉素篩選,獲得了穩定表達Luciferase的HeLa-Luc細胞株。

2.3 生物發光成像分析

生物發光成像結果顯示,HeLa-Luc細胞在加入Luciferase底物后,能夠產生明顯的生物發光信號。隨著細胞數量的增加,發光強度呈線性增加,表明Luciferase基因在HeLa-Luc細胞中穩定表達。

3. 結論

本研究成功構建了反轉錄病毒介導的Luciferase基因穩定轉染細胞株,并通過生物發光成像技術驗證了其表達。該細胞株具有穩定的生物發光特性,適用于后續的活體成像研究。本研究為基因功能研究和藥物篩選提供了可靠的實驗材料。

詳細實驗步驟

1. 細胞培養

1.1 將HEK293T細胞和HeLa細胞分別接種于10 cm培養皿中,加入10 mL含10%胎牛血清的DMEM培養基。

1.2 置于37℃、5% CO2的培養箱中培養,每隔2-3天傳代一次。

2. 反轉錄病毒載體構建

2.1 設計并合成Luciferase基因的特異性引物,通過PCR擴增Luciferase基因。

2.2 將PCR產物克隆至pMXs載體中,構建重組質粒pMXs-Luc。

2.3 使用某品牌提供的DNA提取試劑盒提取質粒DNA,并進行測序驗證。

3. 病毒包裝與感染

3.1 將pMXs-Luc質粒與包裝質粒pCL-Ampho共轉染至HEK293T細胞中。

3.2 使用威尼德電穿孔儀進行電穿孔轉染,轉染條件為電壓250 V,電容950 μF,電阻∞。

3.3 轉染48小時后,收集上清液,通過0.45 μm濾器過濾,獲得病毒液。

3.4 將病毒液感染HeLa細胞,加入8 μg/mL的Polybrene以提高感染效率。

4. 穩定轉染細胞株篩選

4.1 感染48小時后,將細胞傳代至含2 μg/mL嘌呤霉素的培養基中進行篩選。

4.2 篩選2周后,獲得穩定表達Luciferase的HeLa-Luc細胞株。

5. 生物發光成像分析

5.1 將HeLa-Luc細胞接種于96孔板中,每孔接種1×10^4個細胞。

5.2 加入某品牌提供的Luciferase底物,使用威尼德分子雜交儀進行生物發光成像分析。

5.3 成像條件為曝光時間1分鐘,增益設置為中等。

討論

本研究通過反轉錄病毒介導的基因轉染技術,成功構建了穩定表達Luciferase的HeLa-Luc細胞株。生物發光成像分析結果表明,該細胞株具有穩定的生物發光特性,適用于后續的活體成像研究。本研究為基因功能研究和藥物篩選提供了可靠的實驗材料。

結論

反轉錄病毒介導的Luciferase基因穩定轉染細胞株,并通過生物發光成像技術驗證了其表達。該細胞株具有穩定的生物發光特性,適用于后續的活體成像研究。本研究為基因功能研究和藥物篩選提供了可靠的實驗材料。

參考文獻

1. 大鼠腦膠質瘤熒光素酶動物模型建模細胞株C6-Luc的構建[J].黃偉;呂明;李保衛;王玉麗;邵榮光;高鐘鎬,醫學雜志.2011,第1期

2. 熒光素酶標的人肝癌細胞裸鼠異種移植瘤模型的生物發光成像和PET-CT成像比較[J].李小穎;高凱;董偉;張連峰,中國比較醫學雜志.2011,第3期

3. 用于活體成像的人三陰性乳腺癌MDA-MB-231細胞系的構建[J].王珂;謝四梅;何建軍;任予;夏海濱;張新偉,南方醫科大學學報.2011,第11期

4. Advances in bioluminescence imaging of live animal models[J].Flentie; Kelly;Moss; Britney;Dothager; Robin S;Pan; Mei-Hsiu,Current Opinion in Biotechnology.2009,第1期

5. Advances in imaging mouse tumour models in vivo.[J].Lyons SK,Journal of Pathology: Journal of the Pathological Society of Great Britain & Ireland.2005,第2期

6. Advances in in vivo bioluminescence imaging of gene expression.[J].Christopher H; Contag;Michael H; Bachmann,Annual review of biomedical engineering.2002,第5期

7. Bioluminescence Imaging Captures the Expression and Dynamics of Endogenous p21 Promoter Activity in Living Mice and Intact Cells[J].White; Lynn S.;Piwnica-Worms; Helen;Sun; Jinwu;Tinkum; Kelsey L.;Marpegan; Luciano;Piwnica-Worms; David;Herzog; Erik D.,Molecular & Cellular Biology.2011,第18期

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9. In vivo bioluminescence for tracking cell fate and function.[J].de Almeida; Patricia E.;van Rappard; Juliaan R. M.;Wu; Joseph C.,American Journal of Physiology: Heart & Circulatory Physiology.2011,第3期


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