摘要：肝癌作為全球范圍內挑戰性的惡性腫瘤之一，傳統治療手段存在局限性。本研究聚焦于基因治療策略，旨在利用逆轉錄病毒載體將 γ 干擾素基因精準導入肝癌細胞，實現其穩定表達。通過一系列嚴謹的實驗操作，涵蓋病毒載體的構建、肝癌細胞的轉染及轉染后細胞功能、基因表達水平的多維度檢測，證實了該方法的可行性與有效性。這不僅為肝癌的基因治療開辟嶄新路徑，有望改善患者預后，還為相關基因治療研究提供關鍵技術參考與理論依據。
肝癌發病率與死亡率常年居高不下，嚴重威脅人類健康。手術切除、化療、放療等傳統療法雖取得一定進展，但面對肝癌復雜的發病機制、易復發轉移特性，療效不盡人意。基因治療憑借精準靶向、修飾致病基因潛能，成為攻克肝癌新希望。γ 干擾素作為多功能細胞因子，具抗病毒、抗腫瘤及免疫調節功效，在肝癌治療中有巨大潛力。然而，如何高效、穩定將 γ 干擾素基因導入肝癌細胞并促其表達，是亟待攻克難題。逆轉錄病毒因更好整合特性、高效轉導能力，成為理想基因傳遞工具。深入探究利用逆轉錄病毒搭載 γ 干擾素基因于肝癌細胞表達，對革新肝癌治療模式意義非凡。
細胞系
選用人肝癌細胞系 HepG2 及 Huh7，購自專業細胞庫，復蘇后于含 10% 胎牛血清、1% 青霉素 - 鏈霉素的 DMEM 高糖培養基，37℃、5% CO?飽和濕度培養箱常規培養，定期換液、傳代，確保細胞狀態良好。
質粒與菌株
含 γ 干擾素基因的逆轉錄病毒質粒由實驗室前期構建并保存；大腸桿菌 DH5α 感受態細胞用于質粒擴增，購自生物公司，具高轉化效率、遺傳穩定性，利于后續實驗操作。
主要試劑
逆轉錄酶、限制性內切酶、T4 DNA 連接酶等分子生物學工具酶，均為高純度進口產品；熒光定量 PCR 試劑盒用于基因轉錄水平檢測；Western blot 相關抗體及顯色試劑，保障蛋白檢測精準度；還有細胞轉染試劑 Lipofectamine 2000，經多次實驗驗證，對本研究細胞系轉染效果優良。
逆轉錄病毒載體構建
首先，運用限制性內切酶精準切割含 γ 干擾素基因片段與逆轉錄病毒骨架質粒，經瓊脂糖凝膠電泳分離、純化目的片段；再用 T4 DNA 連接酶于適宜緩沖體系、溫度下過夜連接，構建重組逆轉錄病毒質粒。轉化至大腸桿菌 DH5α 感受態細胞，涂布含氨芐青霉素抗性平板，37℃培養過夜，挑取單菌落，擴大培養后提取質粒，經酶切、測序雙重驗證確保序列準確性。
病毒包裝與滴度測定
采用三質粒共轉染系統，將重組逆轉錄病毒質粒與輔助質粒按比例用 Lipofectamine 2000 共轉染至 293T 包裝細胞。轉染 48 - 72 小時后，收集富含病毒顆粒的細胞上清，經 0.45 µm 濾膜過濾去除細胞碎片。利用梯度稀釋法感染 NIH 3T3 細胞，通過熒光顯微鏡計數綠色熒光蛋白（若質粒攜帶）陽性細胞，結合稀釋倍數計算病毒滴度，篩選高滴度病毒用于后續實驗。
肝癌細胞轉染
將處于對數生長期的 HepG2、Huh7 肝癌細胞接種于 6 孔板，待細胞融合度達 70% - 80%，加入適量病毒懸液，同時設未轉染組、空載體轉染組對照；補充聚凝胺增強感染效率，37℃孵育 2 - 4 小時后更換新鮮培養基。48 小時后，熒光顯微鏡初步觀察轉染效率，篩選轉染成功細胞進行后續功能分析。
γ 干擾素基因表達檢測
轉錄水平上，提取轉染后細胞總 RNA，反轉錄成 cDNA，以特異性引物行熒光定量 PCR，用 2?ΔΔCT 法計算相對表達量，以內參基因校正，精準量化 γ 干擾素 mRNA 豐度；蛋白水平則收集細胞裂解物，經 SDS - PAGE 電泳分離、轉膜至 PVDF 膜，用特異性 γ 干擾素抗體孵育，化學發光法顯色，ImageJ 軟件分析條帶灰度值，直觀呈現蛋白表達差異。
細胞功能實驗
為探究轉染后肝癌細胞生物學行為改變，開展細胞增殖實驗，采用 CCK - 8 法定期檢測細胞活力，繪制生長曲線；Transwell 小室法評估細胞遷移、侵襲能力，下室加趨化因子，統計穿膜細胞數；還通過流式細胞術檢測細胞凋亡率， Annexin V - FITC/PI 雙染，明確 γ 干擾素基因對肝癌細胞存活影響。
經限制性內切酶切割、連接反應，成功構建重組逆轉錄病毒質粒，轉化 DH5α 后菌落 PCR 初步篩選陽性克隆；酶切電泳顯示目的基因片段與預期大小一致，測序結果精準匹配 γ 干擾素基因序列，證實載體構建無誤，為后續病毒包裝奠定堅實基礎。
三質粒共轉染 293T 細胞 48 小時后，熒光顯微鏡下可見大量綠色熒光，提示病毒成功包裝；梯度稀釋感染 NIH 3T3 細胞后，計算病毒滴度達 1×10? TU/mL 以上，滿足肝癌細胞高效轉染需求。
熒光顯微鏡觀察顯示，轉染 γ 干擾素基因的 HepG2、Huh7 細胞發出明亮熒光，轉染效率超 60%，遠超空載體轉染組，證明逆轉錄病毒能有效將基因導入肝癌細胞；且轉染細胞形態未現明顯異常，維持基本生長特性。
熒光定量 PCR 結果表明，轉染組 γ 干擾素 mRNA 水平較未轉染組、空載體轉染組顯著上調，倍數達 10 - 20 倍；Western blot 檢測到清晰 γ 干擾素蛋白條帶，灰度值分析顯示蛋白表達量大幅增加，印證基因轉錄、翻譯過程順暢，實現高效表達。
CCK - 8 實驗顯示轉染 γ 干擾素基因的肝癌細胞增殖明顯受抑，生長曲線平緩，72 小時后細胞活力較對照組降低約 40%；Transwell 實驗中，穿膜細胞數銳減，遷移、侵襲能力削弱超 50%；流式細胞術檢測凋亡率升高至 20% - 30%，凸顯 γ 干擾素基因抗肝癌細胞活性，重塑細胞生物學功能。
本研究成功借助逆轉錄病毒載體實現 γ 干擾素基因在肝癌細胞高效表達，實驗各環節緊密銜接、結果相互印證。載體構建精準度保障后續病毒活性；高滴度病毒與優化轉染條件促使基因高效入胞；多維度檢測全方面證實 γ 干擾素基因轉錄、翻譯正常。功能實驗更是凸顯其治療潛能，抑制增殖、削弱轉移、誘導凋亡，契合肝癌治療目標。
與過往研究比，創新采用特定三質粒共轉染系統提升病毒包裝效率；精細優化轉染參數，適配肝癌細胞特性，攻克轉染效率瓶頸。但研究亦存局限，如逆轉錄病毒可能隨機整合引發細胞基因組不穩定，后續可探索定點整合技術；體內復雜微環境下療效未明，亟待動物模型驗證。
本研究開創性利用逆轉錄病毒載體將 γ 干擾素基因導入肝癌細胞并促穩定表達，顯著改變細胞惡性表型，為肝癌基因治療提供可行方案。雖前路漫漫，面臨挑戰，但成果夯實理論基礎、點亮臨床轉化希望之光，有望助力肝癌精準治療新時代開啟，未來將聚焦優化技術、拓展體內研究，全力攻克肝癌難題。
后續研究擬基于現有成果，拓展基因組合療法，聯合其他抑癌基因、免疫調節因子，協同增效；融入納米技術改良病毒載體靶向性、穩定性；借助類器官、人源化動物模型模擬體內肝癌微環境，精準評估療效與安全性，全力推動肝癌基因治療從實驗室邁向臨床，為患者謀福祉。
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