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首頁 >> 技術(shù)文章 >> siRNA轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)的關(guān)鍵點(diǎn)
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序列設(shè)計(jì):siRNA 的序列設(shè)計(jì)是實(shí)驗(yàn)成功的基礎(chǔ)。應(yīng)遵循一定的原則,如選擇靶基因的保守區(qū)域,避免非特異性結(jié)合位點(diǎn);同時(shí),要考慮 siRNA 的二級(jí)結(jié)構(gòu)和熱力學(xué)穩(wěn)定性,以提高其沉默效率。目前,有多種在線設(shè)計(jì)工具可供使用,但仍需結(jié)合實(shí)驗(yàn)?zāi)康暮图?xì)胞類型進(jìn)行優(yōu)化。
合成方法:化學(xué)合成是常用的 siRNA 合成方法,具有純度高、準(zhǔn)確性好的優(yōu)點(diǎn)。此外,還可以通過體外轉(zhuǎn)錄或基于載體的表達(dá)系統(tǒng)來制備 siRNA。不同的合成方法各有優(yōu)缺點(diǎn),需要根據(jù)實(shí)驗(yàn)需求和預(yù)算進(jìn)行選擇。
陽離子脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染試劑:具有較高的轉(zhuǎn)染效率,能夠與 siRNA 形成復(fù)合物,通過與細(xì)胞膜的相互作用進(jìn)入細(xì)胞。但其細(xì)胞毒性相對(duì)較大,可能會(huì)影響細(xì)胞的正常生理功能。
陽離子聚合物轉(zhuǎn)染試劑:如聚乙烯亞胺(PEI),能夠有效地壓縮 siRNA 并促進(jìn)其細(xì)胞內(nèi)攝取。其轉(zhuǎn)染效率較高,且細(xì)胞毒性相對(duì)較低。然而,PEI 的分子量和電荷密度等因素會(huì)影響其轉(zhuǎn)染性能,需要進(jìn)行優(yōu)化選擇。
病毒載體轉(zhuǎn)染試劑:如腺病毒、慢病毒等,能夠高效地將 siRNA 導(dǎo)入細(xì)胞,并且可以實(shí)現(xiàn)長期穩(wěn)定的基因沉默。但病毒載體的制備過程較為復(fù)雜,且存在一定的安全風(fēng)險(xiǎn),需要在嚴(yán)格的生物安全條件下操作。
細(xì)胞類型的選擇:不同的細(xì)胞類型對(duì) siRNA 轉(zhuǎn)染的敏感性和耐受性存在差異。因此,在實(shí)驗(yàn)前應(yīng)根據(jù)研究目的選擇合適的細(xì)胞系或原代細(xì)胞。同時(shí),要了解細(xì)胞的生長特性和培養(yǎng)條件,確保細(xì)胞處于良好的生長狀態(tài)。
細(xì)胞培養(yǎng)條件:細(xì)胞應(yīng)在適宜的培養(yǎng)基、溫度、濕度和二氧化碳濃度下培養(yǎng)。在轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)前,要確保細(xì)胞達(dá)到合適的密度,一般為 60% - 80% 匯合度,以保證轉(zhuǎn)染效率和細(xì)胞活性。
操作步驟:將適量的 siRNA 和脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染試劑分別稀釋于無血清培養(yǎng)基中,然后將兩者混合,室溫孵育一定時(shí)間,形成 siRNA - 脂質(zhì)體復(fù)合物。將復(fù)合物加入到細(xì)胞培養(yǎng)液中,輕輕搖勻,繼續(xù)培養(yǎng)一定時(shí)間后,更換為含血清的培養(yǎng)基。
影響因素:脂質(zhì)體與 siRNA 的比例、孵育時(shí)間和溫度、細(xì)胞密度等都會(huì)影響轉(zhuǎn)染效率。一般來說,需要通過預(yù)實(shí)驗(yàn)來確定最佳的轉(zhuǎn)染條件。此外,血清中的蛋白質(zhì)可能會(huì)與脂質(zhì)體復(fù)合物結(jié)合,降低轉(zhuǎn)染效率,因此在轉(zhuǎn)染過程中通常使用無血清培養(yǎng)基。
操作步驟:將細(xì)胞懸浮于適當(dāng)?shù)碾姶┛拙彌_液中,加入 siRNA,然后將細(xì)胞懸液轉(zhuǎn)移至電穿孔杯中。設(shè)置合適的電穿孔參數(shù)(如電壓、脈沖時(shí)間、脈沖次數(shù)等),進(jìn)行電穿孔操作。電穿孔后,將細(xì)胞轉(zhuǎn)移至培養(yǎng)皿中,加入培養(yǎng)基進(jìn)行培養(yǎng)。
影響因素:電穿孔參數(shù)的選擇是關(guān)鍵,過高的電壓和過長的脈沖時(shí)間可能會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞死亡,而過低的參數(shù)則會(huì)降低轉(zhuǎn)染效率。此外,細(xì)胞類型、細(xì)胞密度、siRNA 的濃度等也會(huì)對(duì)轉(zhuǎn)染效果產(chǎn)生影響。在實(shí)驗(yàn)過程中,需要針對(duì)不同的細(xì)胞和實(shí)驗(yàn)條件進(jìn)行優(yōu)化。
操作步驟:對(duì)于腺病毒載體,首先需要在合適的細(xì)胞系中擴(kuò)增和純化病毒。然后將病毒以適當(dāng)?shù)母腥緩?fù)數(shù)(MOI)加入到細(xì)胞培養(yǎng)液中,感染一定時(shí)間后,更換為新鮮的培養(yǎng)基。對(duì)于慢病毒載體,需要將病毒與細(xì)胞在含有聚凝胺等增強(qiáng)感染試劑的條件下共培養(yǎng),然后進(jìn)行篩選和培養(yǎng)。
影響因素:病毒載體的滴度、感染復(fù)數(shù)、感染時(shí)間以及細(xì)胞的狀態(tài)等都會(huì)影響轉(zhuǎn)染效率和基因沉默效果。在使用病毒載體時(shí),要注意病毒的保存和使用條件,避免病毒失活。同時(shí),要對(duì)感染后的細(xì)胞進(jìn)行篩選和鑒定,以獲得穩(wěn)定表達(dá) siRNA 的細(xì)胞株。
RT - PCR 檢測:通過提取細(xì)胞總 RNA,反轉(zhuǎn)錄為 cDNA,然后利用特異性引物進(jìn)行 PCR 擴(kuò)增,檢測靶基因 mRNA 的表達(dá)水平。基因沉默效果通常以相對(duì)于對(duì)照組的 mRNA 表達(dá)抑制率來表示。
Western blot 檢測:提取細(xì)胞總蛋白,利用特異性抗體進(jìn)行 Western blot 分析,檢測靶蛋白的表達(dá)水平。通過比較轉(zhuǎn)染組和對(duì)照組中靶蛋白的灰度值,來評(píng)估基因沉默效果。
熒光素酶報(bào)告基因檢測:如果靶基因的下游調(diào)控區(qū)含有熒光素酶報(bào)告基因,可以將其與 siRNA 共轉(zhuǎn)染到細(xì)胞中,通過檢測熒光素酶的活性來間接反映靶基因的表達(dá)水平和沉默效果。
熒光標(biāo)記 siRNA:可以使用熒光標(biāo)記的 siRNA 進(jìn)行轉(zhuǎn)染,然后在熒光顯微鏡下觀察細(xì)胞內(nèi)熒光的分布情況,計(jì)算熒光陽性細(xì)胞的比例,以評(píng)估轉(zhuǎn)染效率。
流式細(xì)胞術(shù)檢測:通過流式細(xì)胞儀檢測熒光標(biāo)記的 siRNA 或轉(zhuǎn)染試劑與細(xì)胞結(jié)合的情況,從而準(zhǔn)確地測定轉(zhuǎn)染效率。同時(shí),還可以分析細(xì)胞的活性和凋亡情況,評(píng)估轉(zhuǎn)染對(duì)細(xì)胞的影響。
MTT 法:將細(xì)胞接種于 96 孔板中,進(jìn)行 siRNA 轉(zhuǎn)染后,加入 MTT 溶液,繼續(xù)培養(yǎng)一定時(shí)間。然后去除培養(yǎng)液,加入 DMSO 溶解甲瓚結(jié)晶,通過酶標(biāo)儀測定吸光度值,計(jì)算細(xì)胞存活率,以評(píng)估細(xì)胞毒性。
LDH 釋放法:檢測細(xì)胞培養(yǎng)上清中乳酸脫氫酶(LDH)的活性,LDH 是一種細(xì)胞內(nèi)酶,當(dāng)細(xì)胞受損時(shí)會(huì)釋放到培養(yǎng)液中。通過比較轉(zhuǎn)染組和對(duì)照組中 LDH 的活性,來評(píng)估細(xì)胞毒性。
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