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神經(jīng)膠質(zhì)細胞培養(yǎng)實驗

時間：2023/1/5閱讀：1457
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材料與儀器

大鼠
CMF-Hanks液 胰蛋白酶 DMEM F12
水浴鍋 培養(yǎng)箱

步驟

一、原代培養(yǎng)

1.  選用生后1周的新生大白鼠，用碘酒,酒精棉球消毒，斷頭取其大腦皮層組織。
 
2.  解剖顯微鏡下，剝離腦膜，切除大腦髓質(zhì)部分。
 
3.  將大腦皮質(zhì)在無Ca2+、Mg2+Hanks液(CMF-Hanks液)中剪碎。
 
4.  室溫下靜置10 min。
 
5.  在37℃水浴箱中用0.125%的胰蛋白酶(用CMF-Hanks液配制)消化30 min。
 
6.  加入少許含20%血清的DMEM/F12(DMEM與F12為1:1)混合培養(yǎng)液(下同)，用吸管稍加吹打至胰酶液與培養(yǎng)液混勻。離心5 min(1 000 r/min)。
 
7.  吸去上清含酶液，重新加入含血清培養(yǎng)液，用吸管反復吹打至組織塊消散為止。制成細胞懸液(暫稱初細胞懸液)。
 
8.  將初細胞懸液接種到玻璃瓶(或培養(yǎng)皿)中，于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中孵育30 min。
 
9.  翻轉(zhuǎn)培養(yǎng)瓶,吸出瓶中的細胞懸液。用孔徑為75μm的不銹鋼網(wǎng)過濾。
 
10.  將濾過液離心10 min(1 000 r/min)，濃縮成約3ml的細胞懸液(暫稱為次細胞懸液)。
 
11.  將次細胞懸液種植到預先涂布有多聚賴氨酸的培養(yǎng)瓶中。接種的細胞密度約1×104個/cm2。
 
12.  置CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)3-5h,再補加足夠的培養(yǎng)液,繼續(xù)培養(yǎng)9-14 h。培養(yǎng)液顏色略微變黃時換液。

二、原代培養(yǎng)物的傳代
 
1.  吸取舊培養(yǎng)液用CMF-Hanks液洗滌2次。
 
2.加入少許0.125%的胰蛋白液消化15 min。以有血清培養(yǎng)液終止胰酶活性。
 
3.稍事手動搖晃,倒掉含酶液。加入有血清培養(yǎng)液。
 
4.用吸管反復吹打使細胞從培養(yǎng)瓶壁脫落。收集細胞懸液,離心10 min(1 000 r/min)。棄上清液，給細胞沉淀物再加入培養(yǎng)液制成細胞懸液。
 
5.重復原代培養(yǎng)時8-10步。
 
6.將細胞懸液按0.5×105個/cm2的密度種植在經(jīng)鼠尾膠原包被的培養(yǎng)瓶中。
 
7.送入CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)3-5 h，再加足夠的培養(yǎng)液,繼續(xù)培養(yǎng)。

三、結(jié)果

分離的大鼠大腦皮質(zhì)細胞在原代培養(yǎng)4 h后，部分細胞即可長出細小胞突。培養(yǎng)3-4 d之后，細胞數(shù)量便明顯增大。大鼠大腦皮質(zhì)細胞原代培養(yǎng)一般在9-14 d，以星形膠質(zhì)細胞為主的細胞即可長滿培養(yǎng)瓶壁。


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