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步驟
材料
無菌
細胞培養,如 1X104~ 1X106 個細胞,24 孔板
3H-亮氨酸。無血淸培養基中 2 MBq /ml (~50uCi/ml) (特異活性并不重要,因為它將由培養基中的亮氨酸濃度決定)
非無菌
SLS 或 SDS,1% (35m mol/L ) 溶于 0 .3 mol/L NaOH
三氯醋酸(TCA)
液閃瓶
Eppendorf 管
閃爍液,最小含水為 10%
操作步驟
1. 細胞生長至所需密度。
2. 從孵箱中取出培養板,加人預溫的溶于培養液或 BSS 中的放射性同位素,稀釋度為 1:10 (如 l00ul/ml/孔)。
3. 盡快地將細胞放回孵箱。
4 . 繼續培養 4~24 h。
提示: 不同的蛋白質更新率不盡相同。本操作程序并不針對任何特定的一種蛋白質,而可用于快速生長細胞中的總蛋白。當第一次用來測定一個細胞系的蛋白質合成時,要核實合成率在所選的孵育時間內是否呈線性。如果氨基酸池比飽和時低,可發生延遲。
5 . 從孵箱中取出培養物,小心從孔中吸去培養液至適當的廢棄放射性液體容器中(見 7.7.2 節)。
1. 用冷 HBSS 或 D-PBSA 輕輕地清洗細胞。
提示 某些單層培養,特別是一些松散貼附的連續細胞系,諸如 HeLa-S , 可能在清洗時便離散開來。如遇這種情況,移去同位素,并加入甲醇,將單層固定,靜止 lO min,小心地移走甲醇,令其晾干。
7.將培養板置于冰上,加人 0.6mol/L TCA ,于 4°C 靜置 lO min ,:然后吸去所有未摻入的前體物。
8. 重復第七步 2 次,但每次只許 5 min 。
9 . 以 MeOH 清洗培養物,晾干培養板。
10.加人 0.5 ml 0.3mol/L NaOH ,內含 1% SLS,室溫下靜置 30 min 。
11. 混合每孔中的培養物,將它們移人液閃瓶中。
12. 加入 5m l 閃爍液,在閃爍儀中計數。
提示: 生物降解性閃爍劑(如 Ecoscint),比以甲苯或二甲苯為基礎的閃爍液更好,因為只要是放射活性低于規定量,前者毒性較小,可以與大量的水一起倒入水池 中。對于懸浮培養的細胞,在第 5 步用 1000 g 離心 l0 min ,去除培養基,除了第 9 步外 6,7 ,8 也須重復此步驟,第 9 步的培養板也可在磷光成像儀(phosphorimager) 上直接定量測定。
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