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檢測原理

2D Luminescent Cell Viability Assay借助ATP依賴的熒光素酶催化的熒光素發光反應，通過化學發光信號測定細胞內ATP含量，從而檢測細胞活力或定量檢測活細胞數目，檢測線性范圍寬、靈敏度高、穩定性好。96孔板中，在100個至100,000個細胞范圍內有良好的線性關系，但不同細胞的檢測數量上限會有不同。此外，操作簡單，試劑盒中提供的檢測試劑為即用型，讀數穩定，檢測速度快，完成檢測僅需約10min，無需洗滌細胞，也無需更換或去除培養液。相比于其他常見的細胞活力測定方法，如Calcein-AT、CCK-8等，2D Luminescent Cell Viability Assay更加簡單快捷。

產品優勢

2D Luminescent Cell Viability Assay(abs50065)檢測靈敏度高、線性范圍寬，可兼容少量樣品檢測以及大量樣品的高通量篩選。

1、方便快速：試劑盒中提供的檢測試劑為即用型，讀數穩定，檢測速度快，完成檢測僅需約 10 分鐘；

2、靈敏度高：能夠檢測zui低10nmol的ATP；

3、線性范圍寬：96孔板中，在100個至100,000個細胞范圍內有良好的線性關系，但不同細胞的檢測數量上限會有不同；

4、高通量：可兼容少量樣品檢測以及大量樣品的高通量篩選。

使用方法

一、試劑準備

試劑融化：實驗前一天將試劑取出，置于4℃過夜融化。也可在實驗當天將試劑取出，置于室溫融化，或放置于22℃水浴融化，但需要注意水溫不可超過25℃。

平衡至室溫：若試劑在非室溫條件下融化，使用前可將其置于22℃水浴，確保試劑平衡至室溫后再用于檢測。

注：一般針對5mL包裝需要約10min；50mL包裝需要約20min。

混勻：使用前輕柔顛倒5次使溶液混合均勻。

添加Triton X-100(abs9149)：吸取當次實驗所需體積的試劑，加入適量體積Triton X-100，使其終濃度為0.2%。該液體為檢測工作液（例如：8mLATP檢測試劑加0.2mL Triton X-100）。

二、檢測步驟

1、細胞培養

使用適合進行化學發光檢測的96孔板(abs7149)，每孔接種100μL細胞（根據培養時間確定初始接種的細胞密度，檢測時每孔細胞數量不宜超過10萬個），同時設置不含細胞的培養液的孔作為陰性對照。也可以設置細胞的濃度梯度，以得到最佳的實驗結果。37℃，5% CO₂培養細胞，根據需要在合適的時間加藥處理細胞。

2、（可選）ATP 標準曲線的制作

把制備的 ATP 標準溶液用PBS稀釋成適當的濃度梯度，96孔板每孔加入100μL的標準品。

3、細胞活力檢測

（1）融解凍存的發光法檢測試劑，并平衡至室溫（或22℃恒溫水浴平衡），并取出當次實驗用體積的檢測試劑，添加適量Triton X-100（使其終濃度為0.2%）；

（2）取出細胞培養板，室溫平衡10min（或22℃恒溫平衡，時間不宜過長，盡量控制在30min以內）；

（3）96孔板每孔加入100μL檢測試劑（由于孔的邊緣效應，可能會導致發光信號不穩定，不建議在邊緣鋪板）；

（4）室溫振蕩2min，以促進細胞的裂解；

（5）室溫放置10min，使發光信號趨于穩定；

（6）使用多功能酶標儀進行化學發光檢測。根據儀器要求設置相應的參數，每孔的檢測時間一般為0.25-1s，具體需根據儀器的檢測靈敏度進行適當的調整；

（7）根據化學發光讀數計算細胞的相對活力，或根據ATP標準曲線計算ATP含量從而得出細胞的相對活力。

注：檢測效果因細胞的種類不同而異，對于一些ATP含量特別高的細胞，在細胞數量達到 100,000以上可能會出現化學發光讀數繼續升高，但喪失線性關系。

三、注意事項

1、溫度：試劑中含有熒光素酶，反復凍融會影響其活性。建議分裝后置于-20℃避光保存。試劑及細胞樣品使用前均需平衡至室溫，以避免酶催化效果的影響；

2、化學因素：熒光素酶的反應速率和發光強度受化學環境影響。不同類型的培養基和血清中發光強度和衰減速率存在差異。另外，藥物含量較高時可能會干擾熒光素酶反應，從而影響發光信號。建議設置含有藥物的細胞培養液對照孔以排除溶劑的干擾。如培養基對發光強度影響較大，可在檢測前去除，并用PBS潤洗一次，此時，Triton X-100添加量減半，至終濃度0.1%即可；

3、光敏感：本試劑對光敏感，如果儲存時暴露在光照下，會加快發光強度的衰減。如果試劑從原來的容器轉移，請確保避光保存；

4、ATP 污染：建議操作時佩戴口罩和乳膠手套，避免接觸可能受到污染的表面和設備。操作時避免多次將槍頭jian端插入試劑瓶中。

今天講解就到這了，大家如有細胞實驗問題，歡迎一起交流哦！

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