當培養的細胞增殖達到一定密度后，將會出現密度抑制現象，表現為細胞的生長和分裂速度逐漸減慢，甚至停止。此時如果不及時進行分裝再培養，即傳代培養，細胞將逐漸走向衰老、死亡。將培養的細胞從一個容器以1∶2或其他比率轉移到其他容器中擴大培養，稱為傳代培養。貼附型生長細胞采用酶消化傳代法，而懸浮型生長細胞則采用直接傳代法或離心傳代法，以下將分別加以介紹。
實驗操作
以貼壁細胞培養為例
1、穿好細胞房專用的實驗服，戴好滅菌手套和口罩。
2、從培養箱中取出細胞培養瓶或培養皿（Tip1：一般選擇處于對數期的細胞），用75%酒精消毒外包裝后轉移至到超凈臺中。
3、打開蓋子（Tip2：如果是培養皿，只需打開一個縫隙即可，避免污染），輕輕吸出舊的培養液，加入適量PBS緩沖液洗滌1-2次（Tip3：注意從未培養細胞的側壁加入，以免沖掉細胞），棄去PBS緩沖液。
4、用移液器加入適量胰酶（Tip4：具體量根據實驗需要確定，提前將胰酶37℃預熱，效果更好），蓋好蓋子，“十字"晃動，使胰酶充分接觸細胞。
5、將加入胰酶的細胞培養瓶轉移到倒置顯微鏡載物臺，鏡下觀察細胞消化情況，當細胞變圓且大量脫落時，準備終止消化（Tip5：若初始的細胞密度比較高，加入胰酶后，肉眼也可觀察到細胞脫落，當細胞有一半左右脫落時，即可終止消化，避免反復將培養皿拿出超凈臺，避免增加污染的風險），用75%的酒精噴灑培養瓶表面，轉移到超凈臺。
6、用移液器加入等量含血清培養基，終止消化。移液器充分且柔和地吹打，避免產生氣泡，使細胞*脫落。
7、將培養瓶或培養皿中混合液體轉移至離心管中（離心管規格根據實驗需要確定），配平后離心3-5分鐘左右（離心機轉速根據細胞種類而定，常見的有1000-3000rpm/min）。
8、離心好后，用酒精噴壺噴灑離心管表面，轉移進超凈臺，打開蓋子，將上清液倒入廢液缸。
9、加入適量體積含血清培養基，用移液器或巴氏吸管輕輕吹打，制成細胞懸液。
10、將細胞懸液分裝進2個（或多個）潔凈滅菌培養瓶或培養皿中，加入適量培養基，蓋好蓋子。
11、將分裝好的培養瓶置于倒置顯微鏡載物臺，觀察細胞情況，細胞應保證一定數量，數量太少會影響生長情況。
12、在培養瓶上做標記，注明傳代時間，細胞種類，操作人員等信息。在放入培養箱之前應再次用酒精噴一噴培養瓶表面，然后應記得整理操作臺，用75%酒精擦拭超凈臺臺面，清理廢液和垃圾。
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