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介紹在細胞培養過程中經常用到的培養用液有哪些

時間:2017/5/23閱讀:6532
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一、干細胞平衡鹽溶液(balanced salt solution,BSS):主要是由無機鹽、葡萄糖組成,它的作用是維持細胞滲透壓平衡,保持pH穩定及提供簡單的營養。主要用于取材時組織塊的漂洗、細胞的漂洗、配制其他試劑等。zui簡單的BSS是Ringer。D-Hank"s與Hank"s的一個主要區別是前者不含有Ca2+、Mg2+,因此D-Hank"s常用于配制胰酶溶液。Earle平衡液含有較高的NaHCO3(2.2g/L),適合于5%CO2的培養條件,Hank"s平衡液僅含有0.35g/L NaHCO3,不能用于5%CO2的環境,若放入CO2培養相,溶液將迅速變酸,使用時應注意。

配制溶液應使用雙蒸水或去離子水。如果配方中含有Ca2+、Mg2+,應當首先溶解這些成分。配好的平衡鹽溶液可以過濾除菌或高溫滅菌。

二、消化液:取材進行原代培養時常常需要將組織塊消化解離形成細胞懸液,傳代培養時也需要將貼壁細胞從瓶壁上消化下來,常用的消化液有胰酶(Trypsin)溶液和edta溶液,有時也用膠原酶(collagenase)溶液。

1.胰酶溶液:胰酶活性可用消化酪蛋白的能力表示,常見有1:125和1:250,即一份胰酶可消化125或250份酪蛋白。組織培養用胰酶溶液一般配制成0.1-0.25%濃度,配制時要用不含Ca2+、Mg2+及血清的平衡鹽溶液(如前面的D-Hank"s),因為這些物質會對胰酶產生抑制作用。胰酶作用及溶解的*pH是8-9,配制胰酶溶液應將液體調至pH8左右,充分溶解,過濾除菌。過濾后可以再調只pH7.5,也可不調。

使用細胞清洗液配制胰酶消化液:含0.5%胰酶的細胞清洗液(100ml細胞清洗液加0.5g胰酶),過濾除菌,分裝于4度保存。

2.EDTA溶液:EDTA溶液也常用來解離干細胞,它的作用機制是破壞細胞間的連接。對于一些貼壁特別牢固的細胞,還可以用EDTA和胰酶的混合液進行消化。EDTA溶液的使用濃度為0.02%,配制時應加堿助溶,配制后可過濾除菌,也可高溫消毒滅菌。

3.膠原酶溶液:膠原酶在上皮類細胞原代培養時經常使用,膠原酶作用的對象是膠原組織,因此不容易對細胞產生損傷。膠原酶的使用濃度為0.1-0.3mg/L或200000U/L,作用的*pH為6.5。膠原酶不受Ca2+、Mg2+及血清的抑制,配制時可用PBS。

三、pH調整液:常用的有HEPES液和NaHCO3溶液。

1.NaHCO3溶液:NaHCO3是培養基中必須添加的成分,一般情況下按說明書的要求準確添加,以保證培養基在5%CO2的環境下pH達到設計標準。如果是封閉式培養,即不與5%CO2的環境發生交換達到平衡,所使用的培養基就不能按照說明書所要求加入NaHCO3。此時常用5.6%或7.4%的NaHCO3溶液調節培養基,使之達到所要求的pH環境。

2.HEPES溶液:是一種弱酸,中文名字是羥乙基哌秦乙硫磺酸,對細胞無毒性,主要作用是防止培養基pH迅速變動。在開放式培養條件下,觀察細胞時培養基脫離了5%CO2的環境,CO2氣體迅速逸出,pH迅速升高,若加了HEPES,此時可以維持pH7.0左右。一般在進行克隆化培養時要添加HEPES。

四、抗生素:常用的是青鏈霉素,俗稱“雙抗溶液”。青霉素主要是對革蘭陽性菌有效,鏈霉素主要對革蘭陰性菌有效。加入這兩種抗生素可預防絕大多數細菌污染。通常使用青霉素終濃度0.007-0.008g/100ml,鏈霉素終濃度0.01g/100ml。一般配制成100倍濃縮液,可用PBS或培養基配制。

五、谷氨酰胺補充液:谷氨酰胺在細胞代謝過程中起重要作用,合成培養基中都要添加,由于谷氨酰胺在溶液中很不穩定容易降解,4℃下放置7天即可分解約50%,所以都是在使用前添加。配制好的培養液(含谷氨酰胺)在4℃放置2周以上時,要重新加入原來量的谷氨酰胺,故需單獨配制谷氨酰胺,以便臨時加入培養液內。谷氨酰胺使用終濃度為0.002mol/L。一般配制為100倍濃縮液,即濃度為200mmol/L(29.22g/L),配制時應加溫30℃,*溶解后過濾除菌,分裝至小瓶,儲存于-20℃。使用時,在每100ml培養液中加入0.5~2ml谷氨酰胺濃縮液,終濃度為1~4mmol/L。

六、二肽谷氨酰胺(L-丙氨酰-L-谷氨酰胺)

干細胞培養液中L-谷氨酰胺是大部分細胞培養基的基本成分;而L-谷氨酰胺是一種并不穩定的氨基酸,在中性的水溶液中會自發降解;需要頻繁地補加L-谷氨酰胺。因而在培養操作過程中經常:

(1)頻繁打開蓋子,增加了破壞無菌狀態的可能性;

(2)過多的追加L-谷氨酰胺,增加了培養基中氨的毒性水平。

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