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如何用二氧化碳培養箱進行細胞復蘇

閱讀:4325      發布時間:2018-5-23
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1 準備

   無菌超凈臺,酒精燈,75%酒精噴壺,二氧化碳培養箱,37水浴鍋,離心機;培養瓶,含10%胎牛清的*培養基和基礎培養基以及PBS磷酸緩沖液(提前放置超凈臺使平衡到室溫),無菌工作服(白大褂),口罩,手套,記號筆

2 步驟

   1.穿好無菌工作服,帶上口罩和手套,快速從液氮里取出凍存管,快速放進37水浴鍋緩慢搖晃使細胞解凍,注意凍存管的封口膜不要破裂,防止污染。

   2.解凍后用紙擦干凍存管表面的水滴,酒精噴壺噴灑適量75%酒精消毒凍存管封口處。

   3.開超凈臺,點燃酒精燈燃燒片刻后(可提前準備),凍存管放超凈臺,換新手套,小心打開凍存管,避免污染,無菌吸管將1ml細胞全部吸出至5ml無菌EP管,補加9ml基礎培養基稀釋,1000rpm,離心5min使細胞沉淀,棄上清。

   4.加入新鮮配制的含10%清的培養基4ml,輕輕混勻,用吸管將細胞移至25T培養瓶。

   5.平躺放置培養瓶,8字形混勻后,置于37,5%二氧化碳培養箱培養。

   6.培養24小時后,顯微鏡觀察細胞(貼壁細胞)貼壁后,小心更換培養基,根據不同細胞的生長狀態進行傳代培養,培養瓶上標記:操作者,時間,細胞類型。

   7.有的實驗員的培養基會加入抗生素防止細胞污染,但是這對于掌握細胞培養是非常不利的,不加抗生素培養細胞更能提醒實驗者無菌操作的意識。一旦細胞出現污染,易于發現,一旦發現污染的細胞應立刻煮沸丟棄,以免污染同實驗室其他細胞。

   8.細胞長滿90%-100%即可傳代,小心打開培養瓶,瓶口過酒精燈消毒,棄培養基。

   9.加入1mlPBS,潤洗細胞,重復3次,棄PBS

   10.加入4ml*培養基,用無菌吸管小心吹打貼壁細胞或者用胰蛋白酶消化細胞使細胞脫落。

   11.轉移1/2脫落的細胞至新的培養瓶,各瓶補加*培養基至4ml

   12.小心封口,平躺放置培養瓶,8字形混勻后,置于37,5%二氧化碳培養箱培養。

   13.待長滿后,按同樣的方法傳代培養。

 凍存

當不需要使用細胞或者細胞量足夠時,可以將細胞凍存起來,供以后實驗用

1 準備

    細胞凍存液(20%清、10%DMSO70%基礎培養液),梯度降溫盒

2 步驟

        1.選取活力好,密度約70%細胞用于凍存,此時細胞處于對數生長期,用于凍存。

        2 .細胞吹打或者胰酶消化后,轉移至無菌EP管,1000rpm里面5min

        3.棄上清,加入新鮮配制的細胞凍存液,25T細胞可以加入2ml細胞凍存液,分裝2個凍存管,細胞*密度為5*106-1*107個每ml。

        4.做好標記,放入梯度降溫盒(提前平衡至室溫)。

        5.將梯度降溫盒放入-80冰箱過夜,第二天取出凍存管,快速放入液氮保存。

氧化碳培養箱是進行細胞培養的必要設備,那么在培養細胞時有哪些經驗是我們可以借鑒的呢?下面讓我們一起來看一下。

1、啟蒙老師的重要性

一般進實驗室都有師兄師姐帶著做,他們就是你做細胞的啟蒙老師。他們的操作手法、細節、理論講解就成了你操作的準則,如營養液、細胞瓶的擺放位置;滅菌處理程序;開蓋手法;細胞吹打手法等等。要學會他們的正確操作,在*次的時候就要重視。

2、像養孩子一樣養細胞

細胞真的很脆弱,每天都去看看它,以防止出現培養箱缺水、缺二氧化碳、停電、溫度不夠等異?,F象,也好及時解決這些意外,避免重復實驗帶來的更大痛苦。

3、好細胞要及時保種

細胞要分批傳代,這樣即使有一批出了問題,還有一批備用的。像后者一般人可能不容易做到。有一次細胞污染了,全軍覆沒。當時可后悔沒有保種。

4、每種細胞都有自己的特性,要區別對待。

細胞跟人一樣,不同的細胞,培養特性是不一樣的。培養過程中要細細體會。不同細胞株使用不同的培養基和清。

如平滑肌細胞很活躍,喜歡熱鬧,2~3 天就好多人口,而且不太愛吃喝,真是養的孩子了。內皮細胞和平滑肌細胞性格相近,不過它很不講,也很邋遢,里面有很多分泌屋,要經常換洗才行。RAW264.7 細胞也很開朗,而且很能吃,要經常喂它,頭疼的是細胞很容易活化,培養它的瓶子和環境沒有內毒素才好。

5、培養前的工作準備充分

包括耗材的處理、試劑的配置,無菌檢驗等等。
玻璃器皿的清洗。對于玻璃器皿(細胞瓶、裝營養液的瓶子、小青霉素瓶等)要先用洗衣粉刷干凈(注意死角),然后沖干凈。用酸液浸泡 24 h 以上,之后用清水沖洗 10 遍,除去殘留酸液。瓶子之類,沖洗過程要使勁搖晃。然后在雙蒸水浸泡 24 h。晾干后包扎,160 干烤 2 h 待用。
試劑配置。細胞培養用的液體一般使用雙蒸以上的水即可。并注意 pH 值的調節。
無菌檢驗。主要采用過濾除菌:如胰酶、抗生素、G-418 溶液、各類培養基、丙酮酸鈉、谷氨酰胺等。有些可以采用高壓滅菌:如 PBS、D-Hank's等。

6、試劑分裝保存

包括營養液、胰酶、清等。

清特別重要。清必須貯存于 –20,如果一次無法用完一瓶,可將 4050ml 分裝于無菌酸處理瓶中,甚至置青霉素瓶保存。一般廠商提供的清為無菌,不需再無菌過濾。若發現清有許多懸浮物,則可將清加入培養基內一起過濾,勿直接過濾清。(一般情況下不影響細胞培養)

瓶裝清一定要逐步解凍: 4 冰箱全溶后再分裝,在溶解過程中須規則搖晃均勻(小心勿造成氣泡),使溫度與成分均一,減少沉淀的發生。勿直接由 –20 直接至 37 解凍,因溫度改變太大,容易造成蛋白質凝結而發生沉淀。

熱滅活是指 56,30 分鐘加熱已*解凍之清。水浴鍋升到 56后,將清放入,待溫度升高到 56 后計時,一般 5 分鐘左右規則搖晃均勻一次。此熱處理之目的是使清中之補體成份去活化。除非必須,一般不要作此熱處理,因為會造成沉淀物之顯著增多,且會影響清之品質。注意更換新清(包括不同批次)對細胞的影響。

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