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時間分辯熒光分析法

1 ）銪熒光檢測法

標記靶細胞

1． EuCl3 的制備：稱取 58.08mg Eu2 O3 ，用少量 1N HCl 攪拌至溶解，再用 1N NaOH 調節 pH 至 4.0 。加雙蒸水配成 33 ～ 100mmol/L 的保存液， 4 ℃保存備用。
2． 用預冷的標記液將靶細胞濃度調整到 5 × 106 /ml ，加 50 μ l 10mg/ml 硫酸葡聚糖，置冰浴中 20 分鐘，其間搖晃數次。
3． 加入 30 μ l 100mmol/L CaCl2 溶液終止反應 5 分鐘。
4． 用含 2mmol/L CaCl2 的 RPMI-1640 培養液洗滌細胞 5 次。用含 10 ％小牛血清的 RPMI-1640 培養液將靶細胞配成 5 × 104 /ml 。

檢測方法

1． 在 96 孔圓底細胞培養板中加入靶細胞懸液，每孔加 100 μ l 。
2． 向各孔加 100 μ l 效應細胞，效應細胞與靶細胞的比例根據要求而定，通常為 5 ： 1 ～ 20 ： 1 。自然釋放孔不加效應細胞只加 100 μ l 培養液，最大釋放孔中加 100 μ l 0.5 ％ Triton X-100 。每個實驗置三個復孔。
3． 置 37 ℃ 5 ％ CO2 的二氧化碳培養箱中培養 3 小時。
4． 從每孔吸出 20 μ l 上清液，對應加入另一塊 96 孔酶標板中，向第二塊板每孔加 200 μ l 增強液。室溫中混合 5 分鐘。在時間分辯熒光分析儀上測定各孔的熒光強度。同時做 EuCl3 的標準曲線：用 0.05mol/L pH7.0 檸檬酸緩沖液配制 10 倍梯度
5． 特異性殺傷活性計算： 殺傷活性（％）＝ [ （實驗組熒光強度－自然釋放組熒光強度） / （最大釋放組熒光強度－自然釋放組熒光強度） ] × 100 ％

2 ）用時間分辯熒光檢測法同時檢測 NK 細胞對三種靶細胞的細胞毒性

標記靶細胞

1． 取 107 靶細胞，用洗滌液（含 93mmol/L NaCl, 5mmol/L KCl 和 2mmol/L MgCl2 的 50mmol/L pH7.4 Hepes ，雙蒸水配制）洗滌一次。小心吸去上清液，用 1ml 標記液（洗滌液中加 0.5mg/ml 磷酸葡聚糖和 0.06mmol/L Eu3+ 或 2mmol/L Sm3+ 或 0.2mol/L Tb3+ ，以及比鑭系離子濃度高 5 倍的 DTPA ）懸浮細胞。將細胞懸液置冰上 20 分鐘，每 3 分鐘上下吹打 1 次。
2． 加入 2ml 終止液（洗滌液中加 2mmol/L CaCl2 和 10mmol/L 葡萄糖），終止標記反應并使細胞膜上的孔隙封閉。 5 分鐘后用終止液洗滌 3 次，用細胞培養液洗滌 3 次，每次洗滌時離心 500 × g 10 分鐘。
3． 用細胞培養液將細胞配成 1.2 × 105 /ml 或 5 × 104 /ml 備用。