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多重熒光免疫組化Q&A——第一彈

閱讀:542        發布時間:2023-5-17

Q:我想要進行多色實驗,對于我的樣本有什么要求嗎?

A:您按照免疫組化的標準對您的樣本進行前處理即可。如果是從歷史切片或者蠟塊中挑選用來做多色,請盡量選取相對較新的樣本(一個月內),最長不要選保存超過半年的樣本,可能會有靶點缺失或者強非特異性,導致染色效果欠佳。

 

附上石蠟切片樣本處理推薦:

  • 取新鮮組織(理想的取材厚度是0.2cm~0.3cm),如取的組織過大,需要切小后再做固定,以免組織太厚固定液滲透不良,導致后續染色效果不佳

  • 組織離體后(不要超過30分鐘)迅速轉移到固定液中(一般選用10%中性福爾馬林或4%多聚甲醛),在常溫條件下固定時間為18-24小時,不要固定太長時間,容易導致組織抗原丟失,影響陽性信號顯色。

  • 浸蠟溫度應控制在58~60℃左右,浸蠟用的石蠟應經常更換,以減少石蠟中二甲苯的含量。高溫下的二甲苯容易使組織發脆,細胞收縮,容易導致后續染色過程中組織脫片。

  • 切片厚度最佳為4微米,組織太厚容易導致染料滲透不加,且多層細胞之間熒光發生串擾,影響成像觀察。貼片需選用免疫組化專用的防脫載玻片,不要在水浴撈片環節添加任何粘合劑,撈片后豎直置于吸水紙上去除水分,輕敲去除水滴,不要用紙擦拭玻片。

  • 切片在45℃~65℃烤箱中烤片30-60分鐘左右,到干片為止,否則后續染色過程中易脫片。但需要注意溫度過高或時間過長均會影響抗原的活性,因為在高溫干燥條件下會加速組織切片中抗原的氧化。

 

Q:如果我的樣本是冰凍切片或者細胞爬片,可以用來做多色實驗嗎?

A:可以的,多色實驗本身不局限您的樣本類型,但需要注意的是您的切片或者爬片能否經得起多輪抗體洗脫,在樣本不脫片的情況下,才能有一個比較好的染色效果。如果您是這類樣本,您需要額外準備一瓶抗體洗脫液(abs994),替代多色實驗中的熱修復步驟,采用溫和的洗脫方式,避免高溫高壓破壞切片。需要注意的是,您依舊需要控制切片厚度,盡量保證在單層細胞的厚度,如太厚,多層細胞之間發生重疊,熒光信號會發生串擾。

(PS:石蠟切片是適合做多色實驗的樣本類型!)

 

Q:我該如何選擇用于做多色的抗體呢?

A:多色這項技術突出的一個優勢就在于對一抗種屬沒有特殊的限定,根據樣本種屬選擇即可,我們試劑盒本身配備了二抗(鼠兔通用二抗或者抗兔二抗),您在選取一抗來源的時候,盡可能選擇兔子或者小鼠來源的一抗,如確實找不到鼠或兔來源的一抗也沒有關系,您只需要再準備一個跟該一抗來源適配的能用于免疫組化的HRP二抗即可。另外,您的一抗需要能應用于IHC,并且盡量選擇單克隆抗體,多抗往往容易產生非特異性。

 

Q:我注意到你們多色試劑盒中也是熒光染料,我在操作過程中需要額外避光嗎?

A:不用的,您在常規日光燈環境下操作就可以,我們染料的熒光強度很高,不會那么容易淬滅,但涉及到需要孵育或者保存的時候還是建議您采用避光濕盒進行。

 

Q:我今天做好了多色片子,但無法立即進行掃描觀察,我該怎么保存呢?

A:染好的多色片子可以避光在4℃條件下保存較長的時間,但我們建議您完成染色以后,在兩周內完成成像,并且如果需要長時間保存,建議您用透明指甲油對蓋玻片邊緣進行密封。如保存時間過長,或保存不當,封片劑容易干掉,此時再成像會有較強非特異性,可以使用PBS把蓋玻片洗下來,重新封片以后再觀察,但成像效果依舊會打折扣,還是建議您盡快完成成像。

(PS:雖然熒光染料沒有那么容易淬滅,但若多次成像反復激發,依舊會淬滅,2-3次影響不會很大,但不排除偶然性哦)

 

Q:整個多色實驗一般需要多久能夠完成呀?一天能行嗎?

A:如果您的指標比較少(2~3個指標),恰好您又是“肝帝"愿意熬夜做實驗,那么一天是可以做完的哦,因為我們多色染料有信號放大的功能,且試劑盒搭配的二抗是多聚的HRP二抗,也能放大信號,因此原本需要4℃過夜的一抗孵育,可以在室溫1小時,或者37℃烘箱一小時完成,滿打滿算一天是可以做完實驗的。但如果您不想要這么“肝",當然可以,您只需要在一抗孵育的步驟選擇4℃過夜,第二天再來繼續做二抗孵育等后續操作就行,跟您做IHC實驗一樣,當您指標比較多的時候,可以合理安排,部分抗體室溫1小時,部分抗體4℃過夜,但也不可把“戰線"拉得太長,控制在盡可能短的時間完成實驗,畢竟遲則生變哦。

 

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