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過癮!一文搞懂qPCR引物設計,實驗達人技能!

2024-7-28  閱讀(909)

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不知各位小伙伴在做熒光定量qPCR實驗的時候有沒有遇到過以下這些情況?

 

 

主峰左邊有雜峰,疑似引物二聚體

 

 

主峰右邊有雜峰,疑似非特異擴增

 

 

基因表達無差異

 

每當出現這些情況,就意味著可能要重新做實驗。為確保下一次實驗不出錯,了解其原因十分重要,可能是體系污染導致,也可能是擴增特異性不足導致。在這里小翌教大家從引物設計的角度提升擴增特異性!

 

在進行qPCR引物設計時,相信有不少小伙伴聽過類似“跨內含子設計"的要求,那么,要跨內含子設計是啥?為什么要跨內含子設計呢?

 

 

以人基因組來說,平均每個基因有8.8個外顯子和7.8個內含子,80%的外顯子長度小于200bp,少于10%的內含子長度在1100bp以上,不到0.01%的內含子長度小于20bp

 

我們在進行一些熒光定量qPCR實驗之前,需要提取RNA和反轉錄合成cDNA,cDNA作為模板用于分析基因表達情況。故在DNA序列上設計引物需避開內含子序列區域,選用外顯子區域序列用于引物設計。看到這,有小伙伴會有疑問,那為啥不叫“外顯子設計"或者“去內含子設計"呢,為啥要稱為“跨內含子設計"?

 

是的,引物還需要跨內含子,在設計引物時需要讓一端引物或者兩端引物跨越內含子,否則熒光定量qPCR的熔解曲線可能出現雙峰或者多峰。

 

 

在單個外顯子上進行上下游引物設計

 

在這種情況下,由于產物序列一致且大小一致,從熔解曲線上難以分辨,看上去都是單一的熔解峰,但是在進行數據分析時,往往會有一種感覺,就是基因表達無差異或者差異結果不穩定。

 

 

在兩個外顯子上進行上下游引物設計

 

在這種情況下,產物差距就比較大了,基因組DNA(gDNA)擴增產物較cDNA擴增產物更長,熔解溫度(Tm值)更大,在熔解曲線上表現出來則是主峰右側的雜峰。當然還有一種情況,當以gDNA為模板所需擴增的片段很長,難以擴增,最終產物相對單一,熔解曲線峰也是相對單一的。

 

 

建議的上下游引物設計方式

引物跨內含子設計后,對于引物序列本身還有什么要求呢?接下來小翌給大家分享引物設計原則~

 

qPCR引物設計原則

 

參考項

標準參考

產物長度

80-300bp

引物長度

17-25 base

GC含量

40-60%(45-55%為最佳)

Tm值

上游引物F和下游引物R的Tm值不能相差太大,最好不超過1℃。

引物序列

A、T、C、G整體分布盡量均勻。避開T/C或A/G的連續結構。

3末端序列

避免GC rich或AT rich。3端堿基最好為G或C,盡量避免末端堿基為T。

互補序列

避開引物內部或兩條引物之間有3個堿基以上的互補序列。

兩條引物間的3末端避開有2個堿基以上的互補序列。

特異性

使用BLAST檢索確認引物的特異性。

 

01

產物長度

 

產物擴增長度為80-200bp,必要時可選擇加長。通常擴增效率隨著擴增產物長度增大而減小。但是不能太短,否則難以區分是引物二聚體還是擴增產物。

02

末端序列

 

引物末端最好是G或C,因為GC堿基之間是三個氫鍵連接,能夠保證引物和模板連接的穩定性。

03

互補序列

 

引物3端通常是DNA聚合酶延伸的起點,如果兩條引物在3端互補性過高,則更易形成引物二聚體,從而降低PCR的擴增效率和特異性。

 

若引物自身的互補性高,則會發生自身退火,形成發夾結構,或者兩條一樣的引物形成二聚體,從而降低PCR的擴增效率和特異性。

 

聊完了原則上qPCR引物如何設計之后,接下來讓我們進入小伙伴們最為關注的實戰操作。在這里小翌給大家介紹三種方式設計qPCR引物!

 

Primer3Plus

 


 

 
01

Load server settings 選擇qPCR,后上傳設計引物的序列或粘貼需要設計引物的序列。按照自己的引物設計需求,選擇使用排除的區域Excluded Regions、目的擴增區域Targets和包含區域Included Region

 

02

點擊General Settings按照熒光定量qPCR引物設計原則進行相關參數設置,例如擴增產物長度Primer Size Ranges、引物長度Primer Size、Tm值Primer Tm、GC含量Primer GC%。完成相關參數設置后,點擊右上方綠色按鈕Pick Primers,即可獲得相關引物。

 

03

獲得相關引物序列后,到NCBI blast  進行引物特異性驗證。

Primerbank

 


 

它是哈佛大學的一個PCR引物數據庫,包含 306,800 多種引物,涵蓋大多數已知的人類和小鼠基因。通過 Real Time PCR 測試了與 27681 個小鼠基因相對應的 26855 對引物,然后對 PCR 產物進行瓊脂糖凝膠電泳和測序。根據瓊脂糖凝膠電泳結果,設計成功率為 82.6%(22187 對引物)。

 

 
01

首先在NCBI上找到目的基因的gene ID,例如,這里選用老鼠基因IL6的gene ID 16193。

02

Search by選擇 NCBI Gene ID,Species選擇Mouse,輸入16193,點擊Submit,即可獲得相關引物。

 

03

相關引物還有已驗證的可視化結果。

NCBI

 


 

 
01

打開NCBI,選擇“Gene",輸入想要檢測的基因名稱,我們以人基因“ALAD"為例。

 

02

會出現很多搜索結果,我們選擇需要的種屬來源,即“human",如果你知道Gene ID(每個基因有且只有一個特定的ID,類似于人的),也可以根據Gene ID來選擇。這里我們選擇搜索結果中的第一個。

 

03

點開之后,會出現很長的頁面,耐心往下拉,找到“mRNA and Protein(s)"欄下的NM編號,不同的NM編號,代表不同的isoform。選擇想要檢測的那一個。

 

確定NM號點擊后,可以看到這個isoform的一些基本信息

 

 

例如:gene代表基因長度3129bp,CDS代表編碼蛋白區域149-1141bp。

 

以及此基因的序列,如下圖所示。此序列就是設計引物時對應的模板。

 

04

了解完我們所需的isoform后,我們可以點擊右側的“Pick Primers",就能直接進入Primer-BLAST的頁面進行引物設計了。

 

05

在彈出來的界面里粘貼模板序列或者輸入基因序列號。另外需要設置“上下游引物位置"和“擴增子長度"。最主要的設置就是這兩點了,另外還有“物種名稱"、“數據庫"等其他選項可以設置。

 

 

設置好之后,點擊頁面左下角的“Get Primers"。

 

 

多對引物,選擇合適的引物即可。

 

06

獲得相關引物序列后,到NCBI blast進行引物特異性驗證。

 

 

 

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