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漲知識 | qPCR專場七:認識不同熒光定量PCR方法

2023-10-8  閱讀(251)

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漲知識 | qPCR專場七:認識不同熒光定量PCR方法

 

熒光定量PCR是實驗室中出鏡率非常高的一種檢測方法。該方法通過在PCR體系中添加熒光基團來記錄DNA產物的累積情況,從而達到對PCR過程進行實時監控的目的,并且可以通過數據分析計算出起始模板量,這就是“熒光定量"中“定量"一詞的來源。

熒光定量PCR實驗因為靈敏度高所以經常是差之毫厘謬以千里,所以在實驗過程中,我們需要注意諸多細節,謹慎操作。小伙伴們看到這里就要著急了,我怎樣才能做好qPCR實驗,拿到實驗結果,發表高分文章,走上人生呢?

 

 

熒光定量PCR其本質是通過熒光探針或熒光DNA結合染料和實時熒光定量PCR儀器對PCR擴增產物進行檢測和定量,儀器在PCR熱循環的過程中測量熒光。市面上有多種不同類型的熒光定量PCR試劑,這些熒光定量PCR試劑的差別是什么?如何根據自己的實驗目標去選擇呢?小翌為大家細細道來~

 

圖.PCR循環流程

 

 

 
染料法與探針法的區別
 
 
非特異性熒光標記:染料法
 
 

 

SYBR Green 染料是一種熒光DNA結合染料,能夠結合在任何雙鏈DNA中的小溝上。該染料在游離狀態下,僅發出微弱的熒光,一旦和雙鏈DNA結合,熒光信號便大大增強。在PCR循環中,每形成一條DNA雙鏈,就有一定數量染料結合上去。隨著PCR反應的進行,越來越多的雙鏈DNA形成,熒光強度也隨之增強。

 

 

由于SYBR Green 染料會和任意雙鏈DNA結合并發出熒光信號。當反應中出現引物二聚體或者非特異擴增時,便有可能產生明顯的假陽性信號。具體的表現是熔解曲線呈現雙峰或多峰,擴增曲線中的Ct值相比正常值偏小。

 

 
特異性熒光標記:探針法
 
 
目前市面上幾乎所有的探針法熒光定量PCR都是利用了熒光共振能量轉移現象,探針上存在一定對能產生熒光共振能量轉移的基團,利用PCR反應中的一些類似酶切、雜交等過程,使兩個基團的距離發生變化,使得整個PCR系統中的熒光強度或者熒光種類發生變化,這種變化與PCR產物類型和產物量有直接關系。

 

 

探針法熒光定量有多種類型,例如TaqMan探針法、雙雜交探針法、分子信標探針法和蝎形探針法等。其中TaqMan探針是最常見的探針方法,通常是設計一條與擴增產物能互補能互補雜交的探針,在探針的5’端標記報告基團,在探針3’端標記淬滅基團。當探針完整時,報告基團和淬滅基團之間距離很近,由于熒光共振能量轉移存在,報告基團在入射光激發下不會發出熒光信號。PCR反應進行時,探針雜交在引物下游的位置,當DNA擴增酶移動到探針位置上時,酶本身5’-3’端的外切酶活性會從5’端切割探針,從而使5’端報告基團和3’端標記淬滅基團分離,當基團之間的距離超過熒光共振能量轉移的范圍,報告基團在光照射下,就可發出一定的熒光。由于探針是針對目標序列設計,是特異性的,故而熒光的種類和光信號強度能特異性指示目標序列的種類和數量。

 

 
染料法VS.探針法
 
 

 


染料法熒光定量PCR

探針法熒光定量PCR

特異性

靈敏度

可重復性

多重反應

-

可多重

探針/引物設計

引物

探針+引物

實驗成本

應用

特定基因表達差異分析;DNA定量

特定基因表達分析;DNA定量;SNPs基因分析;基因突變檢測;產前遺傳病檢測;傳染病早期病原體檢測

 

 

 
不同應用的染料法熒光定量
 
進行熒光定量時,靶標均為DNA模板,但是不同來源的DNA,會存在一定的差異。通常進行染料法熒光定量時,選用的最適DNA產物長度為80-300bp。但是當DNA由18-28個核苷酸組成的miRNA反轉錄得到時,選用正確的熒光定量試劑變得尤為重要。

 

 
miRNA的染料法熒光定量檢測
 
 
miRNA的長度很短,通常約18-28個核苷酸,因此無法采用常見的普通反轉錄試劑盒和熒光定量PCR試劑進行miRNA的檢測。目前,市面上采用兩種方法對miRNA進行反轉錄,一種是加尾法(加A法),另一種是莖環法。兩種方式均是通過人為加長序列的方式獲取第一鏈cDNA,該cDNA的長度通常在60-80nt左右。

另外不同miRNA之間堿基序列的差異不大,在僅有的18-28個核苷酸內,不同miRNA甚至會出現僅1個核苷酸不同的現象,高效特異性區分不同miRNA也十分重要。因此,常規的熒光定量可能難以滿足miRNA實驗目標所需,需要選用專門針對短片段擴增,且能高特異性準確定量的熒光定量試劑。

 

 

miRNA的定量檢測不僅可以選用染料法熒光定量,也可選用適宜的探針法熒光定量。

 

 
常見DNA的染料法熒光定量檢測
 
 
市面上常見的染料法熒光定量試劑均可滿足常見DNA的熒光定量檢測,但需要注意的是,由于染料法熒光定量中染料結合任意雙鏈DNA的特性,除需要精心設計引物和進行熔解曲線分析以外,最好選用保證靈敏度和特異性雙兼顧的染料法熒光定量試劑,減少因為DNA擴增酶本身特異性原因造成的非特異擴增。

 

 

 
不同應用的探針法熒光定量
 
探針法熒光定量按照檢測靶標數量可分為單重熒光定量PCR和多重熒光定量PCR。單重熒光定量PCR相對來說比較簡單,即在單個孔中通過一次PCR反應針對一個基因進行擴增檢測。而多重熒光定量PCR則是在單孔中通過一次PCR反應同時針對多個靶標進行擴增,利用一定的檢測方式實現對多個靶標進行檢測。那么,在實際使用時,有什么具體的差別呢?

 

 
場景模擬
 
 
采用相對定量法分析并確定某個生物體經過藥物處理后目的基因的表達情況。采用單重熒光定量PCR試劑,則每個孔中只有一個基因(內參基因或目的基因)擴增,若技術重復為三次,則需要將樣品分成6份,3個用于內參基因檢測,3個用于目的基因檢測,用以檢測目的基因的表達情況。而采用多重熒光定量PCR,進行三次技術重復,僅需將樣品分成3份,3個孔中通過用一個PCR反應擴增內參基因和目的基因,從而檢測目的基因的表達情況。

多重熒光檢測,可以通過單個PCR反應中進行多個基因的擴增從而減少qPCR反應所需要的樣品量,且該方式和單重熒光定量檢測一樣靈敏準確。除了節省樣本量外,還可節省試劑以及設置實驗程序和分析實驗結果所需要的時間。單孔擴增多個基因也可最大限度地減少移液誤差。

使用多重熒光定量PCR也有需要注意的事項,其中最為重要的是,需要保證不同基因在單重熒光定量反應中和多重熒光定量反應中的結果是一致的。尤其是擴增的基因中同時存在著低豐度表達基因和高豐度表達基因。

 

 
兩步RT-qPCR與一步RT-qPCR的區別
 
兩步RT-qPCR首先在一管中使用反轉錄酶將RNA反轉錄成cDNA,通常選用隨機引物、oligo dT或基因特異性引物進行反轉錄。完成反轉錄后,吸取約10%左右的cDNA用于后續熒光定量PCR。

 

 

 
兩步法RT-qPCR的優點
 
 
  • cDNA量充足:反轉錄后產生的cDNA可選擇通過稀釋或者直接使用的方式滿足多次實時熒光定量實驗;

  • 滿足多靶標:通過oligo dT和隨機引物,可以從單個RNA樣本中擴增多個靶標。

 

 
兩步法RT-qPCR的缺點
 
 
  • 便捷性差:兩步反應需要更多的處理,不太適合高通量應用;

  • 污染風險:由于每個步驟都需要使用單獨的管子,污染的風險增加;

  • cDNA產物中殘留試劑的抑制:反轉錄酶和反轉錄緩沖液殘留會一定程度抑制熒光定量PCR,因此在熒光定量PCR中建議僅使用10%的cDNA進行反應。若稀釋不當,相關殘留組分可能會抑制DNA聚合酶。

 

當起始模板是RNA時,可選用一步RT-qPCR進行定量檢測。和常規的兩步RT-qPCR不同的是,該方法在同一管封閉狀態下,完成了反轉錄和熒光定量PCR,節省了操作步驟和操作時間,并減少了反復開蓋帶來的風險。基因特異性引物是必須的,用于反轉錄和定量擴增。若采用Oligo dT或隨機引物將會在一步法中產生非特異性產物并減少目標產物的量。

 

 

 
一步法RT-qPCR的優點
 
 
  • 減少污染:一管一步式可防止在反轉錄和熒光定量PCR階段之間引入污染物;

  • 便捷:移液步驟減少,手動操作時間減少;

  • 高通量檢測:每個樣本獲得結果的總時間縮短且可重現性高;

  • 靈敏度高:所有產生的第一鏈cDNA都可用于實時PCR擴增,一定程度上提高靈敏度。

 

 
一步法RT-qPCR的缺點
 
 
  • 二聚體風險增加:上下游基因特異性引物在42℃-50℃下更易發生二聚體聚合,從而導致非特異擴增;

  • 檢測靶標數少:單一RNA模板能夠檢測的靶標數量相對較少。

 

以上是對不同熒光定量PCR方法的介紹,相信小伙伴們通過小翌的介紹,對如何選擇適合自己的熒光定量PCR方法已經有一定的了解啦。關于如何做好qPCR實驗,小翌會陸續在公眾號里傳授秘籍噠,敬請期待哦。

 

 
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