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人腸類器官培養手冊

2023-4-4  閱讀(534)

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研究背景

腸道是人體重要的消化器官,腸指的是從胃幽門至的消化管, 是消化器官中最長管道,人體腸道結構主要包括小腸和大腸。腸道疾病非常常見,如腸梗阻、慢性炎癥性腸病、結直腸癌等等,其中結直腸癌已成為威脅人類健康最嚴重的疾病之一。因此,腸道的研究是現在非常熱門的領域,有著廣闊的應用前景。

 

 

培養方案
 
 
 
文獻分析一

2009年,Hans Clevers研究團隊利用來源于腸隱窩的單個干細胞(Lgr5+)或單個隱窩結構,在體外成功培養出3D腸道“類器官"。離體的腸道干細胞或隱窩在基質膠、小分子化合物、細胞添加劑以及多種生長因子中培養可不斷增殖,具有自我更新及分化能力,能夠分化形成多種腸道成熟細胞,在腸道疾病模型建立和研究中發揮重要的作用。[1]

圖1. 單細胞在單孔中的集落形成效率[1]

 

1. 隱窩分離,細胞分離和細胞培養

通常在含有2 mM EDTA的PBS中,4℃下孵育30 min,從小鼠小腸中釋放隱窩。對分離的隱窩進行計數并成球。在24孔板中,加入基質膠、生長因子(10-50 ng/mL EGF、500 ng/mL R-spondin 1、100 ng/mL Noggin)孵育。

 

2. 分選實驗

分離的隱窩37℃孵育45 min,分離后的細胞通過孔徑為20 μm的細胞過濾器。將分選的細胞收集在隱窩培養基中,并加入含有Jagged-1多肽(1 μM)的基質膠中,每孔1個細胞(在96孔板中,含5 mL基質膠)。

 

3. 隱窩培養基

48孔板加入250 μL培養基,96孔板100 μL培養基,并且添加小分子化合物Y-27632(10 μM),每隔一天添加一次生長因子,每4天更換一次培養基。

 

4. 傳代

將類器官從基質膠中取出,機械分離成單隱窩結構域,然后轉移到新鮮的基質膠中。每1-2周進行一次,分割比例為1:5。[1]

 圖2. 腸隱窩培養系統的建立[1]

 圖3. b、c、d分別為培養第5天、14天、3周后的情況,e為隱窩樣器官的示意圖[1]

 

在培養小鼠結腸類器官時,培養基中需要添加p38 MAPK激酶抑制劑(SB-202190)、TGF-β抑制劑(A 83-01)、Rho激酶抑制劑(Y-27632)和GSK抑制劑(CHIR-99021)、Jagged-1等小分子化合物,以及EGFR-spondin-1NogginWnt-3A等生長因子。[1] [2] 

 

研究團隊根據腸上皮細胞的生長需求來設計的這樣一個培養系統,Wnt信號傳遞是隱窩增殖的關鍵要求,而Wnt激動劑R-spondin1在體內誘導隱窩明顯增生,表皮生長因子(EGF)的信號轉導與腸道增殖有關,Noggin的轉基因表達誘導了隱窩數量的增加。Rho激酶抑制劑Y-27632抑制胚胎干細胞失巢凋亡,降低細胞死亡率。細胞間的Notch信號對于維持隱窩的增殖至關重要,我們還提供了一種Notch激動性肽(Jagged-1)。[1] [2]

 

 
 
 
文獻分析二

2022年Hans Clevers團隊創新性地引入了IL-22來優化hSIOs培養基組成,極大地提高了腸道類器官的出芽比例,上調潘氏細胞的表達水平,更好地模擬人體內腸道的組成性表達成分。如下圖。

 

圖4.人結腸培養(小分子化合物Nicotinamide、SB 202190和A 83-01對培養的影響)[2]

 

 圖5.人結腸腺癌細胞的培養過程[2]

 
 
 
文獻分析三

類器官培養和藥物刺激的hSIO培養基中需要添加的小分子化合物、添加劑和細胞因子,分別為:B-27(1%),N-乙酰半胱氨酸(1 mM),煙酰胺(10 mM),Alk 4/5/7抑制劑A 83-01(500 nM), p38抑制劑SB 202190(3-10 μM),前列腺素E2(10 nM),CHIR-99021(3-10 μM),Rho激酶抑制劑Y-27632(10 μM)和Primocin(100 μg/mL),BP-1-102LY294002MK-2206雷帕霉素N-2谷氨酰胺HEPES青霉素/鏈霉素R-SpondinNoggin(2%),人EGF(50 ng/mL),人IL-22(2 ng/mL),具體如下圖所示(圖六)。[3]

 

 

 

化合物名稱

貨號

A 83-01

53002ES

SB 202190

53005ES

CHIR-99021

53003ES

Y-27632 dihydrochloride

52604ES

Gastrin I (human)

53007ES

N-Acetyl-L-cysteine

50303ES

Nicotinamide煙酰胺

51402ES

BP-1-102

53174ES

LY294002

52403ES

MK-2206 2HCl

53008ES

Rapamycin雷帕霉素

52404ES

Prostaglandin(PG) E2 前列腺素E2

60810ES

Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL)

60162ES

HEPES (1 M)

60117ES

L-alanyl-L-glutamine solution,200mM L-丙氨酰-L-谷氨酰胺,200mM

60701ES

Primocin

60281ES

B27 Supplement (50X)

60703-60705ES

N-2 supplement,serum free,100X N-2無血清添加劑,100X

60706ES

Recombinant Human IL-22

90121ES

Recombinant Murine IL-22

90155ES

Recombinant Human Wnt -3a protein

92276ES

Recombinant Human Noggin Protein

92528ES

Recombinant Human EGF

92701ES

 

 

培養步驟
 
 
 
人腸類器官的培養

1.重懸隱窩基質膠混合物,孔板中加入一定量的混合物和隱窩培養基(如24孔板可加入50 μL混合物和500 μL培養基);
2.用離心管轉移到超凈工作臺里,PBS(含雙抗)潤洗2-3次,將腸粘膜轉移至含有EDTA(2 mM)的溶液中,置于4℃,小腸消化約30 min,結腸消化約1 h;
3.將消化好的小腸粘膜轉移至離心管中,加入PBS,搖晃均勻后用70 μm的細胞過濾篩過濾,1000 r/min室溫離心5 min,結腸隱窩無需過濾;
4.棄上清,加入培養基重懸沉淀,計數,隱窩的數量約10個/μL為佳;
5.加入一定量的懸液到離心管中,室溫離心5 min;
6.加入預冷的基質膠混合物(基質膠:培養基為2:1)重懸沉淀;
7.將重懸液按一定量接種在預熱的孔板中;

8.每個孔加入一定量的預熱的隱窩培養基,37℃培養1-2周。

 

 
 
 
人腸類器官的傳代


9.在培養板中,每孔加入一定量的培養基,用槍頭將基質膠小心的刮出,取懸液,轉移到離心管中;
10.將要傳代的隱窩置于冰上5-10 min;
11.用槍頭吹打基質膠,反復進行,直至基質膠被打碎,中間盡量避免氣泡產生;

12.將消化好的小腸粘膜轉移至離心管中,加入PBS,搖晃均勻后用70 μm的細胞過濾篩過濾,1000 r/min室溫離心5 min,結腸隱窩無需過濾;

13.棄上清,加入培養基重懸沉淀,計數,隱窩的數量約10個/μL為佳;

14.加入一定量的懸液到離心管中,室溫離心5 min;

15.加入預冷的基質膠混合物(基質膠:培養基為2:1)重懸沉淀;

16.可按1:1 - 3:1進行傳代培養;

 

 
 
 
人腸類器官的凍存


17.將需要凍存的類器官置于冰上5-10 min;
18.收集類器官,離心后棄上清;
19.加入凍存培養液重懸類器官,分裝至凍存管中,置于-80℃,24 h后置于液氮中長期保存。

 

利用腸類器官構建的體外腸道模型,可以極大的推動對腸道疾病發生發展的研究,為高通量藥物篩選、新物研發、藥物功能檢測、靶向治療、個性化精準醫療、再生醫學提供新的重要的研究平臺和途徑。腸道類器官的出現,為腸道疾病的研究和治療打開了一扇全新的大門。

 

參考文獻

[1] Sato T, et al. Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche. Nature. 2009 May 14;459(7244):262-5. doi: 10.1038/nature07935. Epub 2009 Mar 29. PMID: 19329995.

[2] Sato T, et al. Long-term expansion of epithelial organoids from human colon, adenoma, adenocarcinoma, and Barrett's epithelium. Gastroenterology. 2011 Nov;141(5):1762-72. doi: 10.1053/j.gastro.2011.07.050. Epub 2011 Sep 2. PMID: 21889923.

[3] He GW, et al. Optimized human intestinal organoid model reveals interleukin-22-dependency of paneth cell formation. Cell Stem Cell. 2022 Sep 1;29(9):1333-1345.e6. doi: 10.1016/j.stem.2022.08.002. Epub 2022 Aug 23. Erratum in: Cell Stem Cell. 2022 Dec 1;29(12):1718-1720. PMID: 36002022; PMCID: PMC9438971.

 


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