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細胞技術專題:補體介導的細胞毒試驗

2014-4-17  閱讀(2015)

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1、實驗原理

帶有特異抗原的靶細胞(如正常細胞、腫瘤細胞、病毒感染細胞)與相應抗體結合后,在補體的參與下,引起靶細胞膜損傷,導致細胞膜的通透性增加、細胞死亡。染料(例如:伊紅-Y、臺盼藍)可通過細胞膜進入細胞內使細胞著色,故可用于指示死細胞或瀕死細胞,而活細胞不著色。此即補體依賴性細胞毒試驗,利用細胞毒試驗可以檢查細胞膜抗原,亦可鑒定抗體的特異性。

本實驗中,Thy-1抗原是小鼠胸腺T細胞特異的表面抗原,在體外利用抗小鼠Thy-1的單克隆抗體通過補體的協同作用,可殺傷95%以上的胸腺細胞。

2、實驗材料

(1)解剖器械(眼科剪、眼科鑷)、平皿、80~100目不銹鋼網;

(2)試管、lml吸量管、尖吸管;

(3)載玻片、蓋玻片;

(4)C57BL/6J小鼠;

(5)含5%NBS的冷Hank’s液;

(6)抗小鼠Thy-1的單克隆抗體(zui適稀釋度,本室制備);

(7)補體(豚鼠新鮮血清并經小鼠胸腺細胞吸收,預先測定效價并稀釋為*稀釋度);

(8)1%伊紅-Y染液。

3、實驗方法

(1)小鼠胸腺細胞懸液的制備:將4~6周齡小鼠采用頸椎脫臼法處死,取出胸腺放入已加入約4ml冷Hank’s液的平皿中,在100目的不銹鋼網上研磨后,過篩,放入試管,離心1000rpm,5分鐘,用Hank’s液洗兩次。將沉淀的細胞重懸于Hank’s液中,配成1×107/ml細胞懸液。

(2)取試管3支,標明順序,依據下表依次加入1×107/ml胸腺細胞懸液、抗小鼠Thy-1的單克隆抗體(zui適稀釋度)及Hank’s液,放入37℃水浴30分鐘。

 

實驗材料試驗管補體對照管細胞對照管
1×107/ml胸腺細胞懸液0.1ml0.1ml0.1ml
Thy-1單克隆抗體0.1ml————
Hank’s液——0.1ml0.2ml
1:3補體0.1ml0.1ml——

(3)取出后每管加入1%伊紅-Y染液1滴,混勻,室溫放置2分鐘。

(4)重新混勻后分別在一張載玻片上滴片,加蓋玻片鏡檢。先在低倍鏡下觀察,再用高倍鏡觀察,比較3管中細胞死活情況。

4、實驗結果

死細胞呈紅色,無光澤且腫脹變大;活細胞不著色、有光澤且形態正常。

高倍鏡下計數200個細胞并計算其中死細胞的百分數。計算公式如下:死細胞百分數= EQ EQ \F(實驗管死細胞數%-對照管死細胞數%,100%-對照管死細胞數%)

5、注意事項

(1)胸腺細胞制備速度要快,且需在冰浴中進行操作,以保持細胞活力;

(2)抗Thy-1的單克隆抗體和補體的效價要在預實驗中確定;

(3)細胞對照管死細胞數若超過5%,實驗需重新做;

(4)細胞滴加到載玻片上后長時間放置不檢測也可導致假陽性反應。

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