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細胞技術專題:大鼠星型膠質細胞培養實驗

2014-3-3  閱讀(1402)

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標簽: 大鼠 星型 膠質

大鼠星型膠質細胞培養可以:(1)用于神經系統發育、分化及再生等基礎研究;(2)腦缺血預處理上調神經保護蛋白的機制研究;(3)腦損傷和腦疼痛的研究;(4)新蛋白的功能研究。

 

 

實驗方法

  • 酶消化法
  • 胰酶消化法
  • 胰蛋白酶消化法
實驗材料

大鼠胚胎

試劑、試劑盒

L-15培養基 膠原酶 Dnase D-MEM-BS FCS-DMEM 阿糖胞苷

儀器、耗材

離心機 水浴鍋 培養瓶 培養箱

實驗步驟

一、分離大鼠胚胎(16-18周)新皮層,置于L-15(或Hank’s平衡鹽/DMEM溶液,無Hepes)培養基中,除去腦膜和血管、海馬、尾核和其他非皮層組織。

二、 用解剖刀將其切成1 mm3大小的組織塊。

三、用1ml槍頭轉移250 μl膠原酶儲存液(1.33%,溶于L-15中)到1ml的L-15(或D-MEM)中。每2只鼠腦組織塊使用1-1.5 ml稀釋膠原酶液。

四、37℃水浴中孵育30 min。

五、1 000 rpm(大約230g)中離心5 min,或3 000 rpm(大約2 000 g)中離心1 min。

六、去上清。

七、在含EDTA-CMF的溶液中重懸細胞,并與胰蛋白酶以1:4~1:10比例混合。可以根據觀察到的細胞消化的情況,適當調整兩者的比例。

八、加入胰蛋白酶的抑制劑和DNase溶液,混合5分鐘。

九、1 000 rpm(大約230 g)中離心5 min,或3 000 rpm(大約2 000 g)中離心1 min。

十、去上清。加入500 μl D-MEM-BS。

十一、輕輕吹打成單細胞懸液,開始用5 ml槍頭吹打10次,在需要時用18-gauge的針頭吹打。( 注意:不要產生氣泡。)200目/300目尼龍網過濾。

十二、將細胞轉移到含10%FCS-DMEM的培養瓶中,培養密度為2X106/25 cm2培養瓶,4~6 X106/75 cm3培養瓶。在37.2℃,37.5%中培養。

十三、第2天換液,以后每隔3天換液。

十四、7-10天,細胞發生融合。

十五、細胞融合后,將瓶蓋用封口膜密封好,在軌跡搖床上培養,旋轉速度以不產生氣泡為宜。37℃振搖。細胞注意避光。

十六、去上清,加入新鮮10%FCS-DMEM。

十七、加入200 μl 1 mM的阿糖胞苷/10 ml培養基。在37.2℃,37.5%中培養孵育48小時以消除分裂的細胞。

十八、換用新鮮10%FCS-DMEM,孵育恢復24小時。

十九、重復17-18步驟,消除所有的分裂細胞

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