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細(xì)胞技術(shù)專題:腫瘤細(xì)胞侵襲試驗(yàn)(Tumour Invasion Assay)

2014-2-18  閱讀(1329)

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、 原理

Matrigel 是從小鼠EHS肉瘤中提取的基質(zhì)成分,含有LN、IV型膠原、接觸蛋白和肝素硫酸多糖,鋪在無聚乙烯吡硌烷酮的聚碳酸酯濾膜上,能在DMEM培養(yǎng)基中重建形成膜結(jié)構(gòu),這種膜結(jié)構(gòu)與天然基質(zhì)膜結(jié)構(gòu)極為相似。

濾膜孔徑一般為8um,而且膜孔都被Matrigel覆蓋,細(xì)胞不能自由穿過,必須分泌水解酶,并通過變形運(yùn)動(dòng)才能穿過這種鋪有Martrigel的濾膜,這與體內(nèi)情況較為相似。

鋪有Martrigel的濾膜放在以Blind Well腔或MICS腔上下室之間,鋪有Martrigel面朝向上室,在下室中加有趨化劑,如一定濃度的LN、FN或小鼠3T3條件培養(yǎng)液或人睪丸上皮成纖維細(xì)胞培養(yǎng)液,上室加入重懸的瘤細(xì)胞,具有侵襲能力的細(xì)胞在趨化劑誘導(dǎo)下開始穿膜運(yùn)動(dòng)。細(xì)胞穿膜所用的時(shí)間與Martrigel的用量有關(guān),選擇25ugMartrigell鋪膜,16小時(shí)后觀察結(jié)果較為合適。穿過濾膜的細(xì)胞多數(shù)粘附在濾膜下表面,可用棉簽將上表面的細(xì)胞拭去,然后用乙醇固定濾膜,PE染色,在光鏡下觀察統(tǒng)計(jì)穿過Martrigel的細(xì)胞數(shù)。另外用Transwell小室也可進(jìn)行重建基質(zhì)膜侵襲分析,這一方法是在Transwell小室吊籃式上腔的濾膜上鋪上30ugMartrigel,加入細(xì)胞72h后觀察結(jié)果。值得注意的是,細(xì)胞在TransWll腔中培養(yǎng)72小時(shí)后,有相當(dāng)數(shù)量穿過濾膜的細(xì)胞不再粘附在濾膜下表面,而是脫落進(jìn)人下腔溶液中.因此統(tǒng)計(jì)穿過基質(zhì)膜的細(xì)胞數(shù)目時(shí)應(yīng)把這部分細(xì)胞考慮在內(nèi)。腫瘤細(xì)胞穿過重建基質(zhì)膜的能力與它的體內(nèi)侵襲轉(zhuǎn)移能力表現(xiàn)出較好的相關(guān)性,可以用重建基質(zhì)膜模型初篩抗侵襲藥物。

在上述分析中,如果不在膜上鋪Martrigel而直接將8um孔徑濾膜安放在侵襲腔室上下腔室之間,細(xì)胞通過變形運(yùn)動(dòng)穿過濾膜,用這種模型對(duì)分析細(xì)胞運(yùn)動(dòng)能力和藥物對(duì)細(xì)胞運(yùn)動(dòng)能力的影響。另外,在下室中加有LN或FN或在濾膜下表面鋪上LN或FN,可分析藥物對(duì)腫瘤細(xì)胞的趨化性或趨固性的影響。

材料

1、Matrigel 基質(zhì)膠(威格拉斯生物技術(shù)(北京)有限公司),10mg/ml,5ml,分裝成0.5ml/只10個(gè)EP管中;用時(shí)加入0.5ml的DMEM;

Matrivgel在冰上維持液態(tài),室溫時(shí)可迅速凝結(jié)成膠。使用前應(yīng)從-20℃轉(zhuǎn)移至4℃待其自然溶化(如放置),避免反復(fù)凍融。使用時(shí)需接觸Matrivgel的試管、移液吸頭等均應(yīng)預(yù)冷于4℃;注意無菌操作;

2、24-transwell (Coster);

3、結(jié)晶紫染料溶液:結(jié)晶紫用甲醇配成0.5%的母液,使用濃度為0.1%,用PBS按1:4稀釋后即為染色液;

4、33%醋酸;

實(shí)驗(yàn)步驟

1、溶液配制:

(1)溶DMEM 500ml;

NE---A液(1μg/μl,1mg/ml)

母液0.1ml(5mg)+ ddH2O up to 5 ml ;過濾消毒,-20℃保存。

NE-DMEM(-6M)

NE---A液(1μg/μl,1mg/ml) 20.5μl

DMEM UP TO 100 ml

過濾消毒,4℃保存

(2)NE+CGRP-DMEM(-6M,100ng)

NE---A液(1μg/μl,1mg/ml) 20.5μl

CGRP-儲(chǔ)存液 50 μl

DMEM UP TO 100 ml

過濾消毒,4℃保存

(3)NE+IFN-DMEM(-6M,50ng)

NE---A液(1μg/μl,1mg/ml) 20.5μl

IFN-γ(25ng/μl) 25 μl

DMEM UP TO 100 ml

過濾消毒,4℃保存

(4)低血清DMEM培養(yǎng)基(上室)

(5)20%FBS-DMEM培養(yǎng)基(下室)

2 、 準(zhǔn)備

(1)溶膠,4℃(Thaw Matrigel at 4℃ overnight.)

(2)室溫下基質(zhì)膠易成凝膠,所以,步驟2和3種使用試管和槍頭要在試驗(yàn)前-20C預(yù)冷。(Matrigel tends to form gel very quickly at room temerature, therefore, pipets and tips using in steps 2 and 3 have to be chilled at prior to experiements.)

3 、 包被基底膜(冰上操作)

(1)用無血清的冷細(xì)胞培養(yǎng)基DMEM稀釋Matrigel膠(10mg/ml to 5 mg/ml)) (Dilute Matrigel (10mg/ml to 5 mg/ml) in serum free-cold cell culture media (RPMI1640, EMEM, DMEM, etc).)

(2)取100ul稀釋膠加到24-well transwell上室中 (Put 100 ul of the diluted matrigel into upper chamber of 24-well transwell)

(3)37℃孵育transwell至少4-5h (Incubate the transwell at 37C at least 4 to 5 h for gelling.)

4 、 水化基底膜

用無血清培養(yǎng)基輕洗凝膠 (Gently wash gelled matrigel with warmed serum free-culture media.)

5 、 準(zhǔn)備細(xì)胞懸液和小室

(1)消化法從細(xì)胞培養(yǎng)瓶中獲取細(xì)胞; (Harvest cells from tissue culture flasks by Trypsin/EDTA;)

(2)用培養(yǎng)基洗3遍(Wash the cells 3 times with culture media (RPMI1640, EMEM, DMEM etc) containing 1 % FBS.)

(3)重懸細(xì)胞,5×105 cells/ml,1% FBS (Resuspend the cells in media containing 1% FBS at a density of 5×105 cells/ml.)

(4)上室加200 ul細(xì)胞懸液 (Put 200 ul of the cell suspension onto the matrigel.)

(5)下室中加入600 ul細(xì)胞培養(yǎng)基,含有5 ug/ml fibronectin作為黏連亞族 (lower chamber of the transwell is filled with 600 ul of culture media containing, as an adhesive subtrate.)

6孵育,37℃,20 to 24 h (Incubate at 37C for 20 to 24 h.

7 、 染色和計(jì)數(shù)

(1)棉簽擦去上室上面的非侵襲細(xì)胞(Scrape off noninvaded cells on the top of the transwell with a cotton swab)

(2)移去transwells,倒置,風(fēng)干(Remove transwells from 24-well plates and stained with Diff-Quick solution.)

(3)24孔板中加入500µl含0.1%結(jié)晶紫,將小室置于其中,使膜浸沒在培養(yǎng)基中,37℃ 30min后取出,PBS清洗。

(4)直徑上取4個(gè)視野,照相,計(jì)數(shù)。

(5)24孔板中加入500µl 33%醋酸,將小室置于其中,浸膜,振蕩10min,充分溶解。取出小室,24孔板于酶標(biāo)儀上570nm測(cè)OD值,間接反應(yīng)細(xì)胞數(shù)。

小技巧:照相前一定要晾干,照相時(shí)將小室正置于載玻片上,在倒置顯微鏡下觀察、照相。經(jīng)濟(jì)、實(shí)用、方便。

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