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PCR技術專題:差示反轉錄PCR實驗

2013-11-25  閱讀(1117)

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標簽: 差示 反轉錄 PCR

差示反轉錄PCR也稱為mRNA差異顯示技術,它是將mRNA反轉錄技術與PCR技術二者相互結合發展起來的一種RNA指紋圖譜技術,具有簡便、靈敏、RNA用量少、效率高、可同時檢測兩種或兩種以上經不同處理或處于不同發育階段的樣品,該方法自問世以來已被廣泛用于差異表達基因的克隆鑒定研究中。

實驗方法

  • mRNA差異顯示法
  • 熒光標記法
實驗方法原理幾乎所有的真核基因mRNA分子的3’-末端,都帶有一個多聚的腺苷酸結構,即通常所說的poly(A)尾巴。因此,在RNA聚合酶的作用下,可按mRNA為模板,以oligo(dT)為引物合成出cDNA拷貝。根據mRNA分子3’-末端序列末端結構的分析可以看到,在這段poly(A)序列起點堿基之前的一個堿基,除了為A的情況之外,只能有C、G、T三種可能。根據這種序列結構特征,P.Peng等人設計合成三中不同的下游引物,它由11個或12個連續的脫氧核苷酸加上一個3’-末端錨定脫氧核苷酸組成,用5’-T11G、5’-T11C、5’-T11A表示,這樣每一種此類人工合成的寡核苷酸引物都將能夠把總mRNA群體的1/3分子反轉錄成mRNA-cDNA雜交分子。于是,采用這三種引物,可以將整個mRNA群體在cDNA水平上分成三個亞群體。然后用一個上游的隨機引物和與反轉錄時相同的oligo(dT)引物對這個cDNA亞群體進行PCR擴增,因為這個上游的引物將隨機結合在cDNA上 ,因此來自不同mRNA的擴增產物的大小是不同的,可以在測序膠上明顯分辨開來,從而篩選出不同樣品間基因差異表達的DNA段。
實驗材料

紅豆杉細胞

試劑、試劑盒

丙烯酰胺 甲叉丙烯酰胺 SuperscriptTMⅡ試劑 檸檬酸鈉 Taq DNA聚合酶 dNTPs 十二烷基肌氨酸鈉 巰基乙醇 RNAimage試劑盒 異硫氰酸胍 焦碳酸二乙酯

儀器、耗材

基因擴增儀 凝膠成像系統 超低溫冰箱 電熱鼓風干燥箱 超凈臺 脫色搖床 核酸定量儀 多用電泳儀 DNA序列分析電泳槽

實驗步驟

一、實驗材料

 

1.  紅豆杉細胞

 

未經MJ誘導處理的A和經MJ誘導處理的B紅豆杉細胞。

 

2.  寡核苷酸引物

 

(1)3’錨定引物:

①H-T11A(2uM): 5’-AAGCTTTTTTTTTTTA-3’

②H-T11C(2uM): 5’-AAGCTTTTTTTTTTTC-3’

③H-T11G(2uM): 5’-AAGCTTTTTTTTTTTG-3’

 

(2)5’ 隨機引物:

 

Kit引物:

①H-AP1(2uM): 5’-AAGCTTGATTGCC-3’

②H-AP2(2uM): 5’-AAGCTTCGACTGT-3’

③H-AP3(2uM): 5’-AAGCTTTGGTCAG-3’

④H-AP4(2uM): 5’-AAGCTTCTCAACG-3’

⑤H-AP5(2uM): 5’-AAGCTTAGTAGGC-3’

⑥H-AP6(2uM): 5’-AAGCTTGCACCAT-3’

⑦H-AP7(2uM): 5’-AAGCTTAACGAGG-3’

⑧H-AP8(2uM): 5’-AAGCTTTTACCGC-3’

 

生工引物:

①H-AP1(2uM): 5’-AAGCTTCATTCCG-3’

②H-AP2(2uM): 5’-AAGCTTCCACGTA-3’

③H-AP3(2uM): 5’-AAGCTTCGGGTAA-3’

④H-AP4(2uM): 5’-AAGCTTGAGTGCT-3’

⑤H-AP5(2uM): 5’-AAGCTTCGGCATA-3’

⑥H-AP6(2uM): 5’-AAGCTTGGAGCTT-3’

⑦H-AP7(2uM): 5’-AAGCTTACGCAAC-3’

⑧H-AP8(2uM): 5’-AAGCTTTAGAGCG-3’

 

特異引物:

①5ac: 5’-GAGTTTCCACCATGGTGT-3’

②ck5: 5’- GGAGTGAGTTTCCACCAT-3’

③10ac: 5’-TTGTTGTAGGGGTGAGTT-3’

④10acb: 5’-CATGGTATATGTGATGGA-3’

⑤2ben: 5’- GTTGTGGGCACAAGATTC-3’

⑥3ben:5’- CATAGTGTATGTGATGGA-3’

⑦Phen:5’-GGTAGTGCATGCGATGCA-3’

 

二、 實驗方法

 

2.  總RNA的提取與檢測

 

(1)用品的準備

 

塑料器皿,如離心管、Tip頭等用0.1%的DEPC水37℃浸泡12小時以上,高壓滅菌并烘干后使用;所用溶液用0.1%的DEPC水37℃浸泡12小時以上,高壓滅菌后4℃保存;玻璃器皿經180℃烘烤12小時以上,冷卻備用。

 

(2)試劑的配置

 

① CSB緩沖液

 

42 mmol/L 檸檬酸鈉(Sodum citrate)

 

0.83%(W/V)十二烷基肌氨酸鈉(N-lauryl sarcosine)

 

0.2 mmol/L 巰基乙醇(β-mercaptoethanol)(使用前加入)

 

(3)RNA提取

 

對懸浮培養細胞A、B進行RNA提取,提取步驟如下:

 

① 50 ml 離心管中加入10 ml 變性勻漿液,冰浴5分鐘。

 

② 取0.5 g 細胞在液氮中研磨至粉末,轉移至預冷的變性勻漿液中,加200 ul β-巰基乙醇,振蕩混勻。

 

③迅速加入1 ml 2 mol/L 乙酸鈉(pH4.0),充分混合。

 

④  加入10 ml 水飽和酚,劇烈振蕩10~15秒,在冰上放置5分鐘。

 

⑤ 加入2 ml 氯仿:異戊醇(24:1),劇烈振蕩10~15秒,在冰上放置15分鐘。

 

⑥ 4℃,12 000 g,離心20分鐘。

 

⑦ 小心移取上層水相,棄去中間相和下層有機相。

 

⑧ 加入6 ml 水飽和酚,劇烈振蕩10~15秒,在冰上放置5分鐘。

 

⑨ 加入6 ml 氯仿:異戊醇(24:1),劇烈振蕩10~15秒,在冰上放置15分鐘

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