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AP融合蛋白的亞克隆和表達

2012-12-18  閱讀(1635)

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1.使用來自篩選出的噬菌??寺〉哪0鍰NA,以及包含與AP融合表達載體的克隆位點相對應的限制性酶切位點的寡核苷酸引物,進行PCR反應。
2.通過瓊脂糖凝膠電泳檢測正確大小的擴增產物。選擇相應方法對PCR產物進行純化。
3.用對應于克隆位點的限制性內切酶消化PCR產物,使用標準的方法將此產物連接到相同酶切后的AP融合蛋白表達載體中。
4,通過標準的方法將連接產物轉化入大腸桿菌中,鋪到含100ug/ml氨芐青霉素的LB平板上。挑取單克隆,利用標準的方法(如限制性酶切或PCR)鑒定是否有插入序列。
5,在LB+100ug/m1氨芐青霉素培養基中,過夜培養少量(約5m1)的陽性克隆菌液。以l/100接種于適合所用誘導系統的表達培養基中。
6.用適合所用的誘導系統的方法培養細胞并誘導表達。7500g離心收集細胞,并棄去上清液。將細胞沉淀在一20℃冷凍超過4小時,或在酒精/干冰混合物上冷凍10分鐘。
7.輕輕地將細胞重懸于TE+PMSF緩沖液中以釋放胞質蛋白。 離心(7500g)沉淀細胞并收集上清液。
8.用一個因所用標簽而異的方法進一步純化融合蛋白。這將使融合蛋白的定量變得更容 易,并能除去可能影響酶解檢測的雜質蛋白。但是,如果AP融合蛋白的表達水平較 高,也可以直接使用胞質裂解原液,因為檢測中已含有一個有效的親和性純化步驟。9.用SDS—PAGE分析胞質蛋白和一系列濃度的基準純化AP。用凝膠光密度測量法(gel densitometry)將樣品中的AP融合蛋白水平定量。

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