初代組織塊培養法
1.剪切：把組織小塊置于小燒杯或青霉素小瓶中，用Hanks液漂洗二三次以去掉表面血污，吸靜Hanks液，用眼科剪反復剪切1mm3塊為止。
2.擺布：用彎頭吸管吸取若干小塊，置于培養瓶中，用吸管彎頭把組織小塊擺布在培養瓶底部，小塊相互距離以0.5cm為宜，每一25ml培養瓶底可擺布20~30塊。
3.輕輕翻轉培養瓶，另瓶底向上，注意翻瓶時勿另組織小塊流動，塞好瓶塞，置36.5℃溫箱培養2小時左右（勿超過4小時），使小塊微干涸。
4.培養：從微箱中取出培養瓶，開塞，46度斜持培養瓶，箱瓶底腳部輕輕注入培養液少許，然后緩緩再把培養瓶翻轉過來，讓培養液慢慢覆蓋附于瓶地上的組織小塊。置溫箱中靜止培養。待細胞從組織塊游出數量增多后。再補加培養液。
傳代培養法
原理
細胞在培養瓶長成致密單層后，已基本上飽和，為使細胞能繼續生長，同時
也將細胞數量擴大，就必須進行傳代（再培養）。 傳代培養也是一種將細胞種保存下去的方法。同時也是利用培養細胞進行各種實驗的必經過程。懸浮型細胞直接分瓶就可以，而貼壁細胞需經消化后才能分瓶。
材料和試劑
1.細胞：貼壁細胞株
2.試劑：0.25％胰酶、1640培養基（含10％小牛血清）
3.儀器和器材：倒置顯微鏡，培養箱、培養瓶、吸管、廢液缸等
操作步驟
1.吸除培養瓶內舊培養液。
2.向瓶內加入胰蛋白酶和EDTA混合液少許，以能覆滿瓶底為限。
3.置溫箱中2~5分鐘，當發現細胞質回縮，細胞間隙增大后，立即終止消化。
4.吸除消化液，向瓶內注入Hanks液數毫升，輕輕轉動培養瓶，把殘余消化液沖掉。注意加Hanks液沖洗細胞時，動作要輕，以免把已松動的細胞沖掉流失，如用胰蛋白酶液單獨消化，吸除胰蛋白酶液后，可不用Hanks液沖洗，直接加入培養液。
5.用吸管吸取營養液輕輕反復吹打瓶壁細胞，使之從瓶壁脫離形成細胞懸液。
6.計數板計數后，把細胞懸液分成等份分裝入數個培養瓶中，置溫箱中培養。
無菌操作注意事項
1.操作前要洗手，進入超凈臺后手要用75%酒精或0.2%新潔爾滅擦試。試劑等瓶口也要擦試。
2.點燃酒精燈，操作在火焰附近進行，耐熱物品要經常在火焰上燒灼，金屬器械燒灼時間不能太長，以免退火，并冷卻后才能夾取組織，吸取過營養液的用具不能再燒灼，以免燒焦形成碳膜。
3.操作動作要準確敏捷，但又不能太快，以防空氣流動，增加污染機會。
4.不能用手觸已消毒器皿的工作部分，工作臺面上用品要布局合理。
5.瓶子開口后要盡量保持45℃斜位。
6.吸溶液的吸管等不能混用。