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簡述bradford法測蛋白濃度實驗過程

閱讀:8629      發布時間:2016-4-20
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Bradford法測蛋白濃度是利用蛋白質-染料結合的原理,定量地測定微量蛋白質濃度的快速靈敏的方法。
Bradford法測蛋白濃度原理
考馬斯亮藍(CBB)測定蛋白質含量屬于染料結合法的一種。考馬斯亮藍在游離狀態下呈紅色,大光吸收在488nm;當它與蛋白質結合后變為青色,蛋白質—色素結合物在595nm波長下有大光吸收。其光吸收值與蛋白質含量成正比,因此可用于蛋白質的定量測定。蛋白質與考馬斯亮藍結合在2min左右的時間內達到平衡,完成反應十分迅速;其結合物在室溫下1h內保持穩定。該法試劑配制簡單,操作簡便快捷,反應非常靈敏,靈敏度比Lowry法還高4倍,可測定微克級蛋白質含量,測定蛋白質濃度范圍為0~1 000μg/ml,bradford法測蛋白濃度是一種常用的微量蛋白質快速測定方法。
Bradford法測蛋白濃度試驗過程
1、試劑:
(1)考馬斯亮藍試劑:
考馬斯亮藍G—250 100mg溶于50ml 95%乙醇,加入100ml 85% H3PO4,用蒸餾水稀釋1000ml, 濾紙過濾。終試劑中含0.01%(W/V)考馬斯亮藍G—250, 4.7%(W/V)乙醇,8.5%(W/V)H3PO4。
(2)標準蛋白質溶液:
純的牛血清血蛋白,根據其純度同0.15mol/L NaCl配制成100 ug/ml蛋白溶液。
2. 器材: (1)可見光分光光度計 (2)旋渦混合器
3、標準曲線的制作
試管編號 0 1 2 3 4 5 6
100ug/ml標準蛋白(ml) 0.0  0.1 0.2  0.3  0.4  0.5  0.6
0.15mol/L NaCl (ml) 1  0.9  0.8  0.7 0.6  0.5 ? 0.4
考馬斯亮藍試劑 (ml) 5 5 5 5 5 5 5
搖勻,1h內以0號管為空白對照,在595nm處比色 
A595nm 
以A595nm為縱坐標,標準蛋白含量為橫坐標(六個點為10ug、20 ug、30 ug、40 ug、50 ug、60 ug),在坐標軸上繪制標準曲線。
4、樣品中蛋白質含量的測定
另取兩支干凈的試管(做一重復),加入合適濃度的待測樣品,使其測定值在標準曲線的范圍內,測定方法同上,由樣品液的吸光度查標準曲線即可求出含量。
注意事項:
1、如果要求嚴格,好在試劑加入后的5~20min內測定光 吸收,因為這段時間內顏色是穩定的。
2、若選擇在旋渦混合器上混合,注意不要太劇烈,以免產生大量氣泡而難于消除。
一、實驗目的
bradford法測蛋白濃度,測定未知蛋白質濃度樣品的吸光度,根據標準曲線得到蛋白質的濃度。配制一組濃度分別為0.10mg/ml,0.08mg/ml,0.06mg/ml,0.04mg/ml,0.02mg/ml,0mg/ml的牛血清蛋白(BSA)溶液,測定這組溶液的吸光度,得到蛋白質濃度對吸光度的一條標準曲線。測定未知蛋白質濃度樣品的吸光度,根據標準曲線得到蛋白質的濃度。
二、bradford法測蛋白濃度實驗過程
1.準備所需的藥品和儀器。
2.計算所需配制的溶液的量。
先配制1mg/ml的牛血清蛋白(BSA)母液,再往母液中加入磷酸緩沖溶液(PBS)配制一組濃度分別為1.0mg/ml,0.8mg/ml,0.6mg/ml,0.4mg/ml,0.2mg/ml的BSA溶液,再將這組溶液稀釋10倍,得到一組濃度分別為0.10mg/ml,0.08mg/ml,0.06mg/ml,0.04mg/ml,0.02mg/ml的BSA溶液。計算*步稀釋各組需要的BSA溶液及PBS溶液的體積。
BSA體積(ul) 100 80 60 40 20
PBS體積(ul) 900 920 940 960 980
BSA濃度(mg/ml) 1.0 0.8 0.6 0.4 0.2
3.具體操作過程。
用天平稱量1.00g牛血清蛋白(BSA),溶于去離子水中,配成100ml的溶液,溶液的濃度為10mg/ml。用移液槍分別取100ul,80ul,60ul,40ul,20ul的BSA溶液,置于1.5ml的EP管中,再分別加入900ul,920ul,940ul,960ul,980ul的磷酸緩沖溶液(PBS)配成1ml的溶液,震蕩使溶液混合均勻。得到一組濃度分別為1.0mg/ml,0.8mg/ml,0.6mg/ml,0.4mg/ml,0.2mg/ml的BSA溶液。
移液槍分別移取100ul剛配好的一組BSA溶液,置于1.5ml的EP管中,各加入900ul的PBS溶液,震蕩使溶液混合均勻。得到一組濃度分別為0.10?mg/ml,0.08mg/ml,0.06mg/ml,0.04mg/ml,0.02mg/ml的BSA溶液。另外量取1ml的PBS溶液(BSA溶液濃度為0?mg/ml)作對照試驗。
用移液槍分別移取50ul配好的一組BSA溶液,滴加到孔板中,再分別加入200ul的考馬斯亮藍(CBB)。靜置10min后,用酶標儀測得這組BSA溶液的吸光度。
bradford法測蛋白濃度實驗結果
通過用Bradford法測蛋白濃度,得到的吸光度對BSA濃度的關系曲線為y=3.09x+0.6807,R2=0.9541。可以看出吸光度—濃度的關系曲線中R2值較小,即測得的吸光度與濃度的線性不是很好。究其原因可能有以下兩點:一是移液槍的操作不是很熟練,二是移液槍在移液過程中存在著氣泡,使移的液體體積不準確。

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