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上海源葉生物科技有限公司>技術文章>Trizol疑難解答

技術文章

Trizol疑難解答

閱讀:5152          發布時間:2010-12-9

般注意事項:

  • Trizol試劑含有苯酚,具有毒性和刺激性,注意操作。如皮膚接觸Trizol,請立即用大量去垢劑和水沖洗,如仍有不適,請聽取醫生意見。
  • RNase污染的主要來源是操作過程中手和空氣中的浮沉,注意隨時勤換手套,樣品盡可能蓋嚴;盡量不要對著RNA樣品呼氣或說話。用0.01%的DEPC水浸泡過夜,然后滅菌,烘干。溶液需用DEPC水配制。加0.01%(體積比) diethyl- pyrocarbonate(DEPC)至重或MiliQ級水中,處理過夜,滅菌即成DEPC水。
  • 細胞裂解必需充分且操作迅速。裂解不*會降低zui后得率,因為一部分RNA會殘留在未裂解的細胞中。細胞裂解之后要看不見顆粒狀物質(結締組織和骨除外)。在清洗和裂解細胞時在低溫下操作,防止在操作過程中釋放的內源RNase降解了RNA。
  • 酵母和一些細菌由于細胞壁的特殊結構,可以加入TRNzol試劑同時加入無RNase的玻璃珠并劇烈振蕩,使細胞裂解充分。
  • TRNzol試劑也適合于樣品和組織裂解液的貯存,這尤其適合于同時處理樣品較多或操作較為費時時。

一:低得率

A:樣品裂解或勻漿處理不*;勻漿不*時,基因組DNA分子仍然很大,溶液粘稠。變性的蛋白質和基因組DNA一起形成絮狀凝集物容易包裹RNA,使之不能有效地釋放到溶液中。

B:沉淀不*:從小于≤2×105動物細胞、≤2 mg動物組織或RNA含量低的樣品中提取RNA時,勻漿體積太大,將造成RNA過分稀釋而不能有效地沉淀下來。當從這樣的樣品中提取RNA時,應按比例減少抽提溶液,異丙醇沉淀后延長冰浴和離心時間,具體實驗參數見相應操作步驟。加入少量糖原可提高RNA產量又不影響RT-PCR。

C:zui后得到的RNA沉淀未*溶解

二:A260/A280<1.65

A.檢測吸光度時,RNA樣品不是溶于TE,而是溶于水。低離子濃度和低pH條件下,A280值會較高。

B.樣品勻漿時加的試劑量太少。

C.勻漿后樣品未在室溫放置5分鐘。

D.水相中混有有機相。

E.zui后得到的RNA沉淀未*溶解。

三:RNA降解

A.組織取出后沒有馬上處理或冷凍;細胞生長過度

B.樣品或提取的RNA沉淀保存于-5--20℃,未在-60--70℃保存。

C.細胞在胰酶處理時被破壞或勻漿中組織或細胞成分未*分散,樣品中RNA酶未*滅活。。

D.溶液或離心管未經RNase去除處理。Tip頭、離心管、貯存管受RNA酶污染。

E.電泳時使用的甲酰氨pH低于3.5

F.樣品存放時間太長,裂解液中b-ME不足;

四:DNA污染

A:操作不規范

B.樣品中含有組織溶劑(如乙醇,DMSO等),強緩沖液或堿性

溶液。

C.樣品勻漿時加的試劑體積太少或樣品量太多,污染有機物和中

間相。

D:在轉錄特別活躍的細胞破碎過程中,由于某種原因一部分mRNA與DNA、蛋白質形成了聚合體的形式.Trizol不能分離這種聚合體,從而造成了在所提取的RNA中有少量基因組DNA的污染.在這種情況下可以用無RNAse的DNAse處理,Trizol再次抽提或蛋白酶K消化后再用酸性苯酚抽提。
 

五:蛋白和多糖污染

離心去上清后得到的RNA沉淀經以下操作應可去除這些污染:在上一步中,每使用1ml Trizol,在水相中加0.25ml異丙醇和0.25ml高鹽溶液(0.8M檸檬酸鈉和1.2 NaCl)。混合,離心,然后按照操作進行。這種方法可使蛋白多糖和多糖留在溶液中,而沉淀出純RNA。從植物中提取RNA時,應在勻漿后離心,并加上以上操作步驟。

 

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